| 中文摘要 | 第4-6页 |
| Abstract | 第6-8页 |
| 第一章 绪论 | 第12-31页 |
| 1.1 光谱探针简介 | 第12-13页 |
| 1.1.1 光谱探针的概念、原理和应用 | 第12-13页 |
| 1.1.2 比色和荧光探针的构造 | 第13页 |
| 1.2 罗丹明类光谱探针 | 第13-17页 |
| 1.2.1 罗丹明衍生物的特点 | 第13-14页 |
| 1.2.2 罗丹明类阳离子光谱探针概述 | 第14-17页 |
| 1.3 Hg~(2+)光谱探针 | 第17-28页 |
| 1.3.1 Hg~(2+)光谱探针概述 | 第17-18页 |
| 1.3.2 罗丹明类Hg~(2+)光谱探针 | 第18-28页 |
| 1.4 罗丹明型光谱探针的传感机理 | 第28-29页 |
| 1.5 本论文的研究目的和内容 | 第29-31页 |
| 第二章 基于罗丹明B、多乙烯多胺和异硫氰酸苯酯的Hg~(2+)荧光探针（RTTU和RPTU） | 第31-49页 |
| 2.1 引言 | 第31页 |
| 2.2 实验部分 | 第31-35页 |
| 2.2.1 主要原料和仪器 | 第31-32页 |
| 2.2.2 中间体及探针的合成 | 第32-33页 |
| 2.2.3 RTTU和RPTU的结构表征和性能测试 | 第33-35页 |
| 2.2.4 用RTTU分析环境水样中的Hg~(2+) | 第35页 |
| 2.3 结果与讨论 | 第35-48页 |
| 2.3.1 RTTU和RPTU的结构分析 | 第35-40页 |
| 2.3.2 RTTU对金属离子的选择性 | 第40页 |
| 2.3.3 RTTU荧光与Hg~(2+)浓度的关系 | 第40-41页 |
| 2.3.4 共存离子对RTTU检测Hg~(2+)的影响 | 第41页 |
| 2.3.5 p H对RTTU检测Hg~(2+)的影响 | 第41-42页 |
| 2.3.6 RTTU检测Hg~(2+)的时间响应性 | 第42页 |
| 2.3.7 用RTTU分析环境水样中的Hg~(2+) | 第42-43页 |
| 2.3.8 RTTU对Hg~(2+)的传感机理 | 第43-45页 |
| 2.3.9 用四乙烯五胺代替三乙烯四胺得到的探针的性能 | 第45-48页 |
| 2.4 本章小结 | 第48-49页 |
| 第三章 基于罗丹明B、三(2-氨基乙基)胺和异硫氰酸苯酯的Hg~(2+)光谱探针（RATU） | 第49-65页 |
| 3.1 引言 | 第49页 |
| 3.2 实验部分 | 第49-52页 |
| 3.2.1 主要原料和仪器 | 第49-50页 |
| 3.2.2 中间体及探针的合成 | 第50页 |
| 3.2.3 RATU的结构表征和性能测试 | 第50-51页 |
| 3.2.4 用RATU分析环境水样中的Hg~(2+) | 第51页 |
| 3.2.5 固体支撑传感器的制备 | 第51-52页 |
| 3.2.6 RATU毒性实验 | 第52页 |
| 3.2.7 RATU用于活细胞成像 | 第52页 |
| 3.3 结果与讨论 | 第52-64页 |
| 3.3.1 RATU的结构分析 | 第52-54页 |
| 3.3.2 RATU检测金属离子的体系选择 | 第54-55页 |
| 3.3.3 RATU对Hg~(2+)的选择性 | 第55-56页 |
| 3.3.4 RATU光谱与Hg~(2+)浓度的关系 | 第56页 |
| 3.3.5 共存离子对RATU检测Hg~(2+)的影响 | 第56-57页 |
| 3.3.6 p H对RATU检测Hg~(2+)的影响 | 第57-58页 |
| 3.3.7 RATU检测Hg~(2+)的时间响应性 | 第58页 |
| 3.3.8 用RATU分析环境水样中的Hg~(2+) | 第58页 |
| 3.3.9 固体支撑传感器对Hg~(2+)的检测 | 第58-59页 |
| 3.3.10 RATU的细胞毒性 | 第59页 |
| 3.3.11 用RATU检测细胞中的Hg~(2+) | 第59页 |
| 3.3.12 RATU对Hg~(2+)的传感机理 | 第59-64页 |
| 3.4 本章小结 | 第64-65页 |
| 第四章 基于罗丹明B和氨乙基硫醚的可逆Hg~(2+)光谱探针（RMTE） | 第65-81页 |
| 4.1 引言 | 第65页 |
| 4.2 实验部分 | 第65-68页 |
| 4.2.1 主要原料和仪器 | 第65-66页 |
| 4.2.2 探针的合成 | 第66页 |
| 4.2.3 RMTE的结构表征和性能测试 | 第66-67页 |
| 4.2.4 用RMTE分析环境水样中的Hg~(2+) | 第67页 |
| 4.2.5 固体支撑传感器的制备 | 第67页 |
| 4.2.6 RMTE的细胞毒性 | 第67-68页 |
| 4.2.7 RMTE用于活细胞成像 | 第68页 |
| 4.3 结果与讨论 | 第68-80页 |
| 4.3.1 RMTE的结构分析 | 第68-70页 |
| 4.3.2 RMTE检测Hg~(2+)时体系的选择 | 第70-71页 |
| 4.3.3 RMTE对金属离子的选择性 | 第71-72页 |
| 4.3.4 RMTE与Hg~(2+)浓度的关系 | 第72页 |
| 4.3.5 共存离子对RMTE检测Hg~(2+)的影响 | 第72-73页 |
| 4.3.6 p H对RMTE检测Hg~(2+)的影响 | 第73-74页 |
| 4.3.7 RMTE检测Hg~(2+)的时间响应性 | 第74页 |
| 4.3.8 用RMTE分析环境水样中的Hg~(2+) | 第74页 |
| 4.3.9 固体支撑传感器对Hg~(2+)的检测 | 第74-75页 |
| 4.3.10 RMTE的细胞毒性 | 第75页 |
| 4.3.11 用RMTE检测细胞中的Hg~(2+) | 第75-77页 |
| 4.3.12 RMTE对Hg~(2+)的传感机理 | 第77-80页 |
| 4.4 本章小结 | 第80-81页 |
| 第五章 结论、创新与展望 | 第81-82页 |
| 参考文献 | 第82-93页 |
| 硕士期间研究成果 | 第93-94页 |
| 致谢 | 第94-95页 |
