| 缩略语表 | 第6-8页 |
| 中文摘要 | 第8-11页 |
| 英文摘要 | 第11-14页 |
| 前言 | 第15-16页 |
| 文献回顾 | 第16-26页 |
| 第一部分 纳米颗粒的制备和表征 | 第26-36页 |
| 1 材料 | 第26-28页 |
| 1.1 试剂和材料 | 第26-27页 |
| 1.2 主要仪器设备 | 第27-28页 |
| 2 方法 | 第28-30页 |
| 2.1 PLA纳米颗粒的制备及亲水性修饰 | 第28页 |
| 2.2 PLA-PEG NPs的表征 | 第28-29页 |
| 2.3 PLA纳米颗粒的乳胶管超声成像 | 第29页 |
| 2.4 标记荧光染料Cy5.5 抗体的制备 | 第29页 |
| 2.5 靶向OPN的PLA纳米探针的制备 | 第29-30页 |
| 2.6 统计学处理 | 第30页 |
| 3 结果 | 第30-33页 |
| 3.1 PLA纳米颗粒的表征 | 第30-31页 |
| 3.2 PLA纳米颗粒的乳胶管超声成像 | 第31-33页 |
| 3.3 荧光染料Cy5.5 的吸收峰及浓度工作曲线 | 第33页 |
| 4 讨论 | 第33-36页 |
| 第二部分 靶向OPN纳米探针的细胞实验及体外成像 | 第36-48页 |
| 1 材料 | 第36-37页 |
| 1.1 细胞株 | 第36页 |
| 1.2 试剂与材料 | 第36-37页 |
| 1.3 主要仪器设备 | 第37页 |
| 2 方法 | 第37-42页 |
| 2.1 RAW264.7 细胞的培养 | 第37-38页 |
| 2.2 MOVAS细胞的培养 | 第38页 |
| 2.3 细胞模型中OPN表达的检测 | 第38-40页 |
| 2.4 CCK-8 法检测纳米颗粒的生物相容性 | 第40-41页 |
| 2.5 泡沫细胞模型对纳米探针的细胞摄取实验 | 第41页 |
| 2.6 统计学处理 | 第41-42页 |
| 3 结果 | 第42-45页 |
| 3.1 泡沫细胞模型及平滑肌表型转换细胞模型中OPN表达的半定量分析 | 第42-43页 |
| 3.2 纳米颗粒的细胞毒性检测 | 第43-44页 |
| 3.3 泡沫细胞模型对纳米探针的细胞摄取实验 | 第44-45页 |
| 4 讨论 | 第45-48页 |
| 第三部分 动脉粥样硬化动物模型的构建及荧光染料标记抗体的在体成像 | 第48-56页 |
| 1 材料 | 第48-49页 |
| 1.1 实验动物 | 第48页 |
| 1.2 试剂与材料 | 第48-49页 |
| 1.3 主要仪器设备 | 第49页 |
| 2 方法 | 第49-52页 |
| 2.1 动脉粥样硬化小鼠模型的建立 | 第49页 |
| 2.2 小鼠动脉粥样硬化模型的鉴定 | 第49-51页 |
| 2.3 荧光染料标记抗体的在体成像 | 第51-52页 |
| 3 结果 | 第52-53页 |
| 3.1 小鼠动脉粥样硬化模型的鉴定 | 第52-53页 |
| 3.2 荧光染料标记抗体的在体成像 | 第53页 |
| 4 讨论 | 第53-56页 |
| 小结 | 第56-57页 |
| 参考文献 | 第57-67页 |
| 个人简历和研究成果 | 第67-68页 |
| 致谢 | 第68页 |
