| 摘要 | 第3-5页 |
| abstract | 第5-6页 |
| 中英文缩略词表 | 第9-11页 |
| 第1章 引言 | 第11-13页 |
| 第2章 材料与方法 | 第13-23页 |
| 2.1 材料 | 第13-15页 |
| 2.1.1 实验动物 | 第13页 |
| 2.1.2 主要试剂 | 第13-14页 |
| 2.1.3 主要实验设备 | 第14-15页 |
| 2.1.4 主要实验试剂配制 | 第15页 |
| 2.2 方法 | 第15-23页 |
| 2.2.1 构建C57BL/6J G93A-SOD1转基因小鼠动物模型 | 第15-16页 |
| 2.2.2 PCR技术检测和筛选转基因小鼠动物模型 | 第16-18页 |
| 2.2.3 实验分组 | 第18页 |
| 2.2.4 标本取材及处理 | 第18-19页 |
| 2.2.5 冰冻切片 | 第19页 |
| 2.2.6 荧光双标免疫组化 | 第19-20页 |
| 2.2.7 BrdU标记及染色方法 | 第20-21页 |
| 2.2.8 阳性细胞的观察和数据收集 | 第21-22页 |
| 2.2.9 统计分析和图像处理 | 第22-23页 |
| 第3章 结果 | 第23-53页 |
| 3.1 PCR凝胶电泳结果 | 第23页 |
| 3.2 荧光免疫组化染色结果 | 第23-53页 |
| 3.2.1 Vimentin阳性细胞在对照组小鼠脑的分布 | 第23-37页 |
| 3.2.2 Vimentin阳性细胞在实验组小鼠脑的表达变化 | 第37-49页 |
| 3.2.3 荧光双标免疫组化结果 | 第49-53页 |
| 第4章 讨论 | 第53-59页 |
| 4.1 NPCS在正常成年小鼠脑内的分布 | 第53-54页 |
| 4.2 NPCS在实验组小鼠脑的分布变化 | 第54-55页 |
| 4.3 NPCS在实验组小鼠脑的迁移分化 | 第55-57页 |
| 4.4 VIMENTIN与NESTIN表达差异 | 第57-59页 |
| 第5章 结论与展望 | 第59-60页 |
| 5.1 结论 | 第59页 |
| 5.2 展望 | 第59-60页 |
| 致谢 | 第60-61页 |
| 参考文献 | 第61-64页 |
| 攻读学位期间的研究成果 | 第64-66页 |
| 综述 | 第66-77页 |
| 参考文献 | 第74-77页 |
