| 中文摘要 | 第4-6页 |
| Abstract | 第6-7页 |
| 第1章 文献综述 | 第11-24页 |
| 1.1 白藜芦醇概述 | 第11页 |
| 1.2 白藜芦醇（Res）的药理活性 | 第11-12页 |
| 1.2.1 抗癌作用 | 第11页 |
| 1.2.2 对心血管系统的影响 | 第11-12页 |
| 1.2.3 抗细菌和真菌作用 | 第12页 |
| 1.2.4 抗氧化和抗自由基作用 | 第12页 |
| 1.3 白藜芦醇合酶（RS）的酶学活性 | 第12-13页 |
| 1.4 白藜芦醇（Res）的生物合成途径 | 第13-14页 |
| 1.5 白藜芦醇合酶（RS）的现代生物学的研究 | 第14-17页 |
| 1.5.1 RS基因的克隆及转化 | 第14-15页 |
| 1.5.2 RS基因的遗传转化的研究 | 第15-17页 |
| 1.6 黄芪组织培养研究进展 | 第17-19页 |
| 1.6.1 黄芪概况 | 第17页 |
| 1.6.2 黄芪细胞和组织培养概况 | 第17-19页 |
| 1.7 植物遗传转化方法的研究 | 第19-22页 |
| 1.7.1 间接载体遗传转化法 | 第19-21页 |
| 1.7.2 直接遗传转化法 | 第21-22页 |
| 1.8 研究的目的意义 | 第22-24页 |
| 第2章 材料与方法 | 第24-40页 |
| 2.1 实验材料与试剂 | 第24-27页 |
| 2.1.1 RS基因序列克隆引物设计 | 第24页 |
| 2.1.2 植物受体材料 | 第24页 |
| 2.1.3 所选用菌株和载体 | 第24-25页 |
| 2.1.4 培养基配置与选择 | 第25-26页 |
| 2.1.5 所用实验缓冲溶液的配置 | 第26-27页 |
| 2.2 实验方法 | 第27-40页 |
| 2.2.1 葡萄中RS基因的克隆分离 | 第27-30页 |
| 2.2.2 pBR121表达载体的构建 | 第30-32页 |
| 2.2.3 膜荚黄芪再生体系的建立 | 第32-33页 |
| 2.2.4 RS基因转化黄芪的研究 | 第33-34页 |
| 2.2.5 黄芪转基因抗性植株的鉴定 | 第34-38页 |
| 2.2.6 黄芪转基因阳性植株和非转基因植株白藜芦醇含量的测定 | 第38-40页 |
| 第3章 结果与分析 | 第40-52页 |
| 3.1 RS基因的克隆 | 第40-41页 |
| 3.2 含RS基因的农杆菌生长曲线的绘制 | 第41-42页 |
| 3.3 黄芪植株再生体系的建立 | 第42-44页 |
| 3.4 黄芪遗传转化体系的建立 | 第44-45页 |
| 3.5 DNA提取 | 第45-46页 |
| 3.6 黄芪转基因抗性植株检测与鉴定 | 第46-49页 |
| 3.6.1 黄芪转基因抗性植株PCR检测结果 | 第46-47页 |
| 3.6.2 黄芪转基因阳性植株Southern blot杂交检测结果 | 第47-48页 |
| 3.6.3 黄芪转基因阳性植株RT-PCR检测结果 | 第48-49页 |
| 3.7 黄芪转基因与非转基因植株中白藜芦醇含量的测定及比较 | 第49-52页 |
| 3.7.1 白藜芦醇含量标准曲线的绘制 | 第49-50页 |
| 3.7.2 黄芪转基因阳性植株和非转基因植株的白藜芦醇比较 | 第50-52页 |
| 第4章 讨论 | 第52-55页 |
| 4.1 高频黄芪再生体系建立 | 第52-53页 |
| 4.2 利用PCR检测阳性植株的问题 | 第53页 |
| 4.3 黄芪转基因阳性植株和非转基因植株中白藜芦醇含量比较 | 第53-55页 |
| 第5章 结论 | 第55-56页 |
| 参考文献 | 第56-61页 |
| 导师简介 | 第61-62页 |
| 作者简介及科研成果 | 第62-63页 |
| 致谢 | 第63页 |
