XOD诱导人肝细胞系L-02细胞自噬模型的建立及线粒体机制研究
| 缩略语表 | 第5-7页 |
| 中文摘要 | 第7-10页 |
| 英文摘要 | 第10-13页 |
| 前言 | 第14-15页 |
| 文献回顾 | 第15-33页 |
| 1 自噬的概念 | 第15页 |
| 2 自噬的基本过程 | 第15-16页 |
| 3 自噬的基本生物学作用和功能 | 第16-22页 |
| 4 自噬的调控 | 第22-29页 |
| 5 研究自噬的常用工具和方法 | 第29-33页 |
| 1 材料 | 第33-35页 |
| 1.1 实验对象 | 第33页 |
| 1.2 主要试剂 | 第33-35页 |
| 1.3 主要仪器 | 第35页 |
| 2 方法 | 第35-42页 |
| 2.1 细胞培养 | 第35-36页 |
| 2.2 细胞活力测定 | 第36页 |
| 2.3 Western Blot | 第36页 |
| 2.4 MDC染色 | 第36-37页 |
| 2.5 免疫荧光 | 第37页 |
| 2.6 自噬体显微观察 | 第37-38页 |
| 2.7 siRNA转染 | 第38页 |
| 2.8 ROS测定 | 第38-39页 |
| 2.9 L-02细胞慢病毒转染 | 第39-40页 |
| 2.10 腺病毒转染 | 第40页 |
| 2.11 SOD2活性检测 | 第40-41页 |
| 2.12 CAT活性检测 | 第41页 |
| 2.13 细胞凋亡检测 | 第41-42页 |
| 2.14 荧光定量PCR | 第42页 |
| 2.15 统计学分析 | 第42页 |
| 3 结果 | 第42-68页 |
| 3.1 氧化应激自噬模型的建立 | 第42-47页 |
| 3.2 XOD诱导自噬模型的确立 | 第47-53页 |
| 3.3 XOD诱导的自噬模型的优势评价 | 第53-57页 |
| 3.4 ROS介导XOD诱导的自噬 | 第57-61页 |
| 3.5 XOD诱导细胞自噬的分子机制 | 第61-62页 |
| 3.6 XOD诱导的自噬对细胞的保护作用 | 第62-64页 |
| 3.7 线粒体在XOD诱导自噬过程中的作用 | 第64-68页 |
| 4 讨论 | 第68-76页 |
| 4.1 氧化应激模型的建立 | 第68-70页 |
| 4.2 XOD诱导自噬模型的确立 | 第70-72页 |
| 4.3 XOD诱导的自噬模型的优势评价 | 第72-73页 |
| 4.4 线粒体ROS介导XOD诱导的自噬 | 第73页 |
| 4.5 XOD诱导细胞自噬的分子机制 | 第73-74页 |
| 4.6 XOD诱导的自噬对细胞的保护作用 | 第74-75页 |
| 4.7 线粒体在XOD诱导自噬过程中的作用 | 第75-76页 |
| 小结 | 第76-77页 |
| 参考文献 | 第77-85页 |
| 个人简历和研究成果 | 第85-86页 |
| 致谢 | 第86页 |
