| 摘要 | 第6-9页 |
| ABSTRACT | 第9-11页 |
| 中英文缩略词表 | 第12-13页 |
| 前言 | 第13-15页 |
| 实验研究 | 第15页 |
| 实验一 不同无血清培养基载体提取SHG44人脑胶质瘤干细胞的比较研究 | 第15-24页 |
| 1 材料与方法 | 第15-16页 |
| 1.1 实验材料 | 第15页 |
| 1.2 主要实验仪器 | 第15页 |
| 1.3 主要实验试剂 | 第15-16页 |
| 2 试验方法 | 第16-17页 |
| 2.1 无血清DMEM/F12(1:1)培养基配制 | 第16页 |
| 2.2 人脑胶质瘤SHG44细胞在含血清培养基中常规培养 | 第16页 |
| 2.3 采用不同无血清载体悬浮培养人脑胶质瘤SHG44干细胞 | 第16-17页 |
| 2.4 免疫荧光染色鉴定胶质瘤干细胞球 | 第17页 |
| 2.5 扫描电镜观察胶质瘤干细胞形态 | 第17页 |
| 2.6 统计分析 | 第17页 |
| 3 实验结果 | 第17-21页 |
| 3.1 人脑胶质瘤SHG44干细胞在不同无血清载体中的悬浮培养 | 第17-19页 |
| 3.2 胶质瘤干细胞标记物鉴定 | 第19-21页 |
| 3.3 扫描电镜下胶质瘤干细胞的形态 | 第21页 |
| 4 讨论 | 第21-24页 |
| 实验二 应用体外培养SHG44胶质瘤干细胞筛选异甘草素抑制其增殖的最佳参数 | 第24-32页 |
| 1 材料与方法 | 第24-25页 |
| 1.1 实验材料 | 第24页 |
| 1.2 主要实验仪器 | 第24页 |
| 1.3 主要实验试剂 | 第24-25页 |
| 2 实验方法 | 第25-26页 |
| 2.1 SHG44人脑胶质瘤细胞的培养 | 第25页 |
| 2.2 SHG44人脑胶质瘤干细胞培养及鉴定 | 第25-26页 |
| 2.3 实验分组 | 第26页 |
| 2.4 CCK-8 法检测细胞活性 | 第26页 |
| 2.5 异甘草素作用下SHG44人脑胶质瘤干细胞形态观察 | 第26页 |
| 2.6 统计学分析 | 第26页 |
| 3 实验结果 | 第26-30页 |
| 3.1 SHG44胶质瘤干细胞镜下形态 | 第26-27页 |
| 3.2 胶质瘤干细胞标志物鉴定 | 第27-28页 |
| 3.3 不同浓度ISL对SHG44人脑胶质瘤干细胞抑制的影响 | 第28-30页 |
| 4 讨论 | 第30-32页 |
| 实验三 异甘草素对SHG44人脑胶质瘤干细胞增殖和分化的影响及作用分子机制 | 第32-43页 |
| 1 材料与方法 | 第32-33页 |
| 1.1 实验材料 | 第32页 |
| 1.2 主要实验仪器 | 第32页 |
| 1.3 主要实验试剂 | 第32-33页 |
| 2 实验方法 | 第33-37页 |
| 2.1 SHG44人脑胶质瘤细胞的培养 | 第33页 |
| 2.2 SHG44人脑胶质瘤干细胞培养 | 第33-34页 |
| 2.3 实验分组 | 第34页 |
| 2.4 免疫荧光染色标记分化胶质瘤干细胞 | 第34页 |
| 2.5 异甘草素作用下SHG44人脑胶质瘤干细胞形态观察 | 第34-35页 |
| 2.6 Western bliot方法步骤 | 第35-36页 |
| 2.7 Real-time PCR方法步骤 | 第36-37页 |
| 2.8 统计学分析 | 第37页 |
| 3 实验结果 | 第37-41页 |
| 3.1 ISL诱导胶质瘤干细胞分化情况 | 第37-40页 |
| 3.2 流式细胞术检测细胞周期结果 | 第40页 |
| 3.3 Real-time PCR检测结果 | 第40-41页 |
| 4 讨论 | 第41-43页 |
| 结语 | 第43-45页 |
| 参考文献 | 第45-48页 |
| 文献综述一 异甘草素抗胶质瘤作用机制的研究进展 | 第48-54页 |
| 参考文献 | 第51-54页 |
| 文献综述二 Notch1通路介导胶质瘤干细胞耐药的研究进展 | 第54-61页 |
| 参考文献 | 第57-61页 |
| 致谢 | 第61-62页 |
| 攻读硕士研究生期间主要成果 | 第62页 |
