摘要 | 第4-6页 |
ABSTRACT | 第6-8页 |
缩写对比表 | 第11-15页 |
第一章 绪论 | 第15-29页 |
1.1 生物表面活性剂的概述 | 第15-18页 |
1.1.1 生物表面活性剂的来源 | 第15-16页 |
1.1.2 生物表面活性剂的分类 | 第16-17页 |
1.1.3 生物表面活性剂的应用 | 第17-18页 |
1.2 鼠李糖脂的研究进展 | 第18-21页 |
1.2.1 鼠李糖脂的化学结构 | 第18-19页 |
1.2.2 鼠李糖脂的性能 | 第19-20页 |
1.2.3 鼠李糖脂的应用及发展趋势 | 第20-21页 |
1.3 铜绿假单胞菌合成鼠李糖脂的研究进展 | 第21-26页 |
1.3.1 鼠李糖脂的生物合成 | 第21-22页 |
1.3.2 鼠李糖脂合成的基因调控 | 第22-25页 |
1.3.3 培养基组分对合成鼠李糖脂的影响 | 第25-26页 |
1.4 本论文的研究内容及意义 | 第26-29页 |
第二章 实验材料及方法 | 第29-45页 |
2.1 实验材料 | 第29-31页 |
2.1.1 菌株与质粒 | 第29页 |
2.1.2 试剂 | 第29页 |
2.1.3 仪器 | 第29-30页 |
2.1.4 培养基的配制 | 第30页 |
2.1.5 试剂的配制 | 第30-31页 |
2.2 实验方法 | 第31-45页 |
2.2.1 PB (Plackett-Burman)试验设计 | 第31-32页 |
2.2.2 响应曲面法试验设计 | 第32-33页 |
2.2.3 鼠李糖脂的测定 | 第33-34页 |
2.2.4 基因敲除载体的构建 | 第34-36页 |
2.2.5 三亲株杂交 | 第36-37页 |
2.2.6 质粒提取 | 第37-38页 |
2.2.7 DNA片段纯化回收 | 第38页 |
2.2.8 大肠杆菌感受态细胞的制备及转化 | 第38-39页 |
2.2.9 DNA酶切反应 | 第39页 |
2.2.10 DNA连接反应 | 第39-40页 |
2.2.11 聚合酶链式反应(PCR)反应体系 | 第40页 |
2.2.12 细菌RNA的提取 | 第40-41页 |
2.2.13 细菌RNA的反转录 | 第41页 |
2.2.14 聚丙烯酰胺凝胶电泳 | 第41-42页 |
2.2.15 荧光实时定量PCR(qPCR) | 第42-45页 |
第三章 实验结果 | 第45-67页 |
3.1 培养基组成的优化 | 第45-51页 |
3.1.1 PB试验结果与分析 | 第45-46页 |
3.1.2 RSM试验结果 | 第46-48页 |
3.1.3 RSM分析与优化 | 第48-50页 |
3.1.4 试验结果验证 | 第50-51页 |
3.2 不同磷酸盐浓度对铜绿假单胞菌PAO1合成鼠李糖脂的影响 | 第51-54页 |
3.2.1 PAO1在不同磷酸盐浓度下鼠李糖脂的产量 | 第51-53页 |
3.2.2 铜绿假单胞菌PAO1在不同磷酸盐浓度下相关基因的差异表达 | 第53-54页 |
3.3 突变菌株的构建以及不同磷酸盐浓度对其产鼠李糖脂的影响 | 第54-64页 |
3.3.1 突变菌株的构建 | 第54-55页 |
3.3.2 rhl系统突变菌在不同磷酸盐浓度下鼠李糖脂的产量 | 第55-57页 |
3.3.3 las系统突变菌在不同磷酸盐浓度下鼠李糖脂的产量 | 第57-61页 |
3.3.4 不同磷酸盐浓度下鼠李糖脂合成相关基因的差异表达 | 第61-64页 |
3.4 讨论 | 第64-67页 |
小结 | 第67-69页 |
参考文献 | 第69-81页 |
致谢 | 第81-83页 |
攻读硕士学位期间取得的科研成果 | 第83页 |