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组织HSP70介导HIFU消融胰腺癌后大鼠的T细胞免疫增强效应

摘要第8-12页
Abstract第12-16页
英文缩写一览表第17-18页
第一章 文献综述第18-22页
    1.1 HSP70在抗原呈递中的作用第18-19页
        1.1.1 HSP70与DC细胞第18-19页
        1.1.2 HSP70与巨噬细胞第19页
    1.2 HSP70在T细胞免疫中的作用第19-20页
        1.2.1 HSP70对白介素的作用第19-20页
        1.2.2 HSP70对干扰素的作用第20页
    1.3 HSP70在肿瘤免疫的作用第20-21页
    1.4 HSP70与HIFU治疗第21-22页
第二章 引言第22-24页
第三章 SD大鼠胰腺原位癌高频B超影像学特征第24-30页
    3.1 材料、试剂和仪器第24-25页
        3.1.1 实验材料第24页
        3.1.2 主要试剂第24-25页
        3.1.3 主要仪器第25页
    3.2 实验方法第25-26页
        3.2.1 实验动物分组第25页
        3.2.2 SD大鼠胰腺癌模型的复制第25-26页
        3.2.3 B超检查SD大鼠胰腺癌第26页
        3.2.4 病理组织学分析第26页
    3.3 实验结果第26-28页
        3.3.1 SD大鼠胰腺癌B超影像学特征分析第26-27页
        3.3.2 病理组织学分析第27-28页
        3.3.3 高频B超影像学对SD大鼠胰腺癌的诊断分析第28页
    3.4 讨论第28-29页
    3.5 小结第29-30页
第四章 HIFU消融大鼠胰腺癌后靶区组织HSP70介导的抗原递呈作用第30-42页
    4.1 材料、试剂和仪器第30-32页
        4.1.1 实验材料第30页
        4.1.2 主要试剂第30-31页
        4.1.3 主要设备第31-32页
    4.2 实验方法第32-33页
        4.2.1 实验分组第32页
        4.2.2 超声治疗参数及过程第32页
        4.2.3 免疫组化检测局部组织HSP70,MHC-II和ZAP70的表达第32页
        4.2.4 Western blot检测局部组织中HSP70,MHC-II和ZAP70的表达第32-33页
        4.2.5 数据分析第33页
    4.3 实验结果第33-39页
        4.3.1 消融后靶区组织中HSP70的表达变化第33-35页
        4.3.2 消融后靶区组织中MHC-II的表达变化第35-37页
        4.3.3 消融后靶区组织中ZAP70的表达变化第37-39页
    4.4 讨论第39-40页
        4.4.1 HSP70与抗原递呈作用第39页
        4.4.2 HSP70与HIFU消融第39-40页
    4.5 小结第40-42页
第五章 HIFU消融胰腺癌后大鼠的T细胞免疫增强效应第42-50页
    5.1 材料、试剂和仪器第42-43页
        5.1.1 实验材料第42页
        5.1.2 主要试剂第42-43页
        5.1.3 主要设备第43页
    5.2 实验方法第43-44页
        5.2.1 实验分组第43页
        5.2.2 ELISA检测外周血中IL-2 和IFN-γ 分泌水平的变化第43-44页
        5.2.3 流式细胞仪检测外周血中CD_3~+/CD_4~+T细胞亚群的变化第44页
        5.2.4 数据分析第44页
    5.3 实验结果第44-48页
        5.3.1 外周血IL-2 分泌水平的变化第44-45页
        5.3.2 外周血IFN-γ 分泌水平的变化第45-46页
        5.3.3 外周血CD_3~+/CD_4~+T细胞数量的变化第46-48页
    5.4 讨论第48-49页
        5.4.1 HIFU消融对外周血Th细胞增殖分化的影响第48页
        5.4.2 HIFU消融对外周血中IL-2 分泌水平的影响第48页
        5.4.3 HIFU消融对外周血中IFN-γ 分泌水平的影响第48-49页
    5.5 小结第49-50页
第六章 全文总结第50-52页
参考文献第52-58页
攻读硕士期间发表论文情况第58-60页
致谢第60页

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