摘要 | 第8-12页 |
Abstract | 第12-16页 |
英文缩写一览表 | 第17-18页 |
第一章 文献综述 | 第18-22页 |
1.1 HSP70在抗原呈递中的作用 | 第18-19页 |
1.1.1 HSP70与DC细胞 | 第18-19页 |
1.1.2 HSP70与巨噬细胞 | 第19页 |
1.2 HSP70在T细胞免疫中的作用 | 第19-20页 |
1.2.1 HSP70对白介素的作用 | 第19-20页 |
1.2.2 HSP70对干扰素的作用 | 第20页 |
1.3 HSP70在肿瘤免疫的作用 | 第20-21页 |
1.4 HSP70与HIFU治疗 | 第21-22页 |
第二章 引言 | 第22-24页 |
第三章 SD大鼠胰腺原位癌高频B超影像学特征 | 第24-30页 |
3.1 材料、试剂和仪器 | 第24-25页 |
3.1.1 实验材料 | 第24页 |
3.1.2 主要试剂 | 第24-25页 |
3.1.3 主要仪器 | 第25页 |
3.2 实验方法 | 第25-26页 |
3.2.1 实验动物分组 | 第25页 |
3.2.2 SD大鼠胰腺癌模型的复制 | 第25-26页 |
3.2.3 B超检查SD大鼠胰腺癌 | 第26页 |
3.2.4 病理组织学分析 | 第26页 |
3.3 实验结果 | 第26-28页 |
3.3.1 SD大鼠胰腺癌B超影像学特征分析 | 第26-27页 |
3.3.2 病理组织学分析 | 第27-28页 |
3.3.3 高频B超影像学对SD大鼠胰腺癌的诊断分析 | 第28页 |
3.4 讨论 | 第28-29页 |
3.5 小结 | 第29-30页 |
第四章 HIFU消融大鼠胰腺癌后靶区组织HSP70介导的抗原递呈作用 | 第30-42页 |
4.1 材料、试剂和仪器 | 第30-32页 |
4.1.1 实验材料 | 第30页 |
4.1.2 主要试剂 | 第30-31页 |
4.1.3 主要设备 | 第31-32页 |
4.2 实验方法 | 第32-33页 |
4.2.1 实验分组 | 第32页 |
4.2.2 超声治疗参数及过程 | 第32页 |
4.2.3 免疫组化检测局部组织HSP70,MHC-II和ZAP70的表达 | 第32页 |
4.2.4 Western blot检测局部组织中HSP70,MHC-II和ZAP70的表达 | 第32-33页 |
4.2.5 数据分析 | 第33页 |
4.3 实验结果 | 第33-39页 |
4.3.1 消融后靶区组织中HSP70的表达变化 | 第33-35页 |
4.3.2 消融后靶区组织中MHC-II的表达变化 | 第35-37页 |
4.3.3 消融后靶区组织中ZAP70的表达变化 | 第37-39页 |
4.4 讨论 | 第39-40页 |
4.4.1 HSP70与抗原递呈作用 | 第39页 |
4.4.2 HSP70与HIFU消融 | 第39-40页 |
4.5 小结 | 第40-42页 |
第五章 HIFU消融胰腺癌后大鼠的T细胞免疫增强效应 | 第42-50页 |
5.1 材料、试剂和仪器 | 第42-43页 |
5.1.1 实验材料 | 第42页 |
5.1.2 主要试剂 | 第42-43页 |
5.1.3 主要设备 | 第43页 |
5.2 实验方法 | 第43-44页 |
5.2.1 实验分组 | 第43页 |
5.2.2 ELISA检测外周血中IL-2 和IFN-γ 分泌水平的变化 | 第43-44页 |
5.2.3 流式细胞仪检测外周血中CD_3~+/CD_4~+T细胞亚群的变化 | 第44页 |
5.2.4 数据分析 | 第44页 |
5.3 实验结果 | 第44-48页 |
5.3.1 外周血IL-2 分泌水平的变化 | 第44-45页 |
5.3.2 外周血IFN-γ 分泌水平的变化 | 第45-46页 |
5.3.3 外周血CD_3~+/CD_4~+T细胞数量的变化 | 第46-48页 |
5.4 讨论 | 第48-49页 |
5.4.1 HIFU消融对外周血Th细胞增殖分化的影响 | 第48页 |
5.4.2 HIFU消融对外周血中IL-2 分泌水平的影响 | 第48页 |
5.4.3 HIFU消融对外周血中IFN-γ 分泌水平的影响 | 第48-49页 |
5.5 小结 | 第49-50页 |
第六章 全文总结 | 第50-52页 |
参考文献 | 第52-58页 |
攻读硕士期间发表论文情况 | 第58-60页 |
致谢 | 第60页 |