摘要 | 第2-3页 |
Summary | 第3-4页 |
缩略词表 | 第5-8页 |
第一章 文献综述 | 第8-20页 |
1.1 植物组织培养 | 第8-10页 |
1.2 小麦遗传转化的研究 | 第10-11页 |
1.3 遗传转化的方法 | 第11-12页 |
1.3.1 基因枪法 | 第11页 |
1.3.2 农杆菌介导法 | 第11-12页 |
1.4 转化部位 | 第12-15页 |
1.4.1 小麦成熟胚 | 第12-13页 |
1.4.2 小麦幼胚 | 第13-14页 |
1.4.3 小麦花药 | 第14-15页 |
1.4.4 小麦茎尖 | 第15页 |
1.5 植物耐盐转基因的研究进展 | 第15-17页 |
1.5.1 导入或改良效应分子基因 | 第16-17页 |
1.5.2 改良或增强调控分子基因 | 第17页 |
1.6 研究的目的与意义 | 第17-19页 |
技术路线 | 第19-20页 |
第二章小麦茎尖再生体系的优化 | 第20-30页 |
2.1 试验材料 | 第20页 |
2.1.1 小麦品种 | 第20页 |
2.1.2 培养基 | 第20页 |
2.2 试验方法 | 第20-22页 |
2.2.1 小麦种子的消毒处理 | 第20-21页 |
2.2.2 茎段的切取 | 第21页 |
2.2.3 茎尖愈伤组织的诱导 | 第21页 |
2.2.4 茎尖愈伤组织的分化 | 第21页 |
2.2.5 生根培养 | 第21页 |
2.2.6 炼苗与移栽 | 第21-22页 |
2.2.7 统计方法 | 第22页 |
2.3 结果分析 | 第22-27页 |
2.3.1 不同基因型对愈伤组织诱导及分化的影响 | 第22-23页 |
2.3.2 茎尖生长天数及茎尖切段部位对愈伤组织诱导的影响 | 第23-24页 |
2.3.3 不同培养基对愈伤组织诱导的影响 | 第24-25页 |
2.3.4 不同激素(2,4-D、KT与 6-BA)对愈伤组织诱导及分化的影响 | 第25-27页 |
2.4 讨论 | 第27-30页 |
第三章 CL5227基因的遗传转化 | 第30-42页 |
3.1 材料与方法 | 第30-31页 |
3.1.1 小麦材料 | 第30页 |
3.1.2 农杆菌菌株 | 第30页 |
3.1.3 小麦茎尖转化所需的培养基 | 第30-31页 |
3.2 试验方法 | 第31-35页 |
3.2.1 转化方法 | 第31-33页 |
3.2.2 小麦转化植株的筛选 | 第33页 |
3.2.3 转基因植株检测 | 第33-35页 |
3.3 结果与分析 | 第35-38页 |
3.3.1 农杆菌浓度和侵染时间对愈伤组织诱导及分化的影响 | 第35-36页 |
3.3.2 共培养时间对愈伤组织分化再生的影响 | 第36页 |
3.3.3 头孢霉素(Cef)对小麦愈伤组织分化再生的影响 | 第36-37页 |
3.3.4 卡那霉素(Kan)及诱导筛选天数对小麦愈伤组织分化的影响 | 第37-38页 |
3.4 讨论 | 第38-42页 |
第四章 结论 | 第42-44页 |
4.1 结论 | 第42页 |
4.2 本研究的创新点 | 第42页 |
4.3 进一步研究与探索 | 第42-44页 |
参考文献 | 第44-53页 |
致谢 | 第53-54页 |
作者简介 | 第54-55页 |
导师简介 | 第55-56页 |