摘要 | 第5-8页 |
Abstract | 第8-10页 |
第一章 前言 | 第13-23页 |
1. RA的发病机制 | 第13-17页 |
1.1 感染因素在RA中的作用 | 第13-14页 |
1.2 遗传因素在RA中的作用 | 第14-15页 |
1.3 免疫细胞在RA中的作用 | 第15-17页 |
2. 抗突变型瓜氨酸化波形蛋白抗体与RA | 第17-19页 |
2.1 蛋白质瓜氨酸化 | 第18页 |
2.2 波形蛋白的生物功能 | 第18-19页 |
2.3 AMCV抗体在RA中的表达 | 第19页 |
3. 抗瓜氨酸化蛋白抗体特异性免疫复合物在RA中的作用 | 第19-23页 |
3.1 ACPA-ICs的形成 | 第20页 |
3.2 ACPA-ICs的致病机制 | 第20-23页 |
第二章 Cit-Ag、Vim、ACCP、AMCV在RA患者滑膜组织、FLSs和血清中的表达检测 | 第23-36页 |
2.1 实验材料 | 第23-27页 |
2.1.1 研究对象 | 第23-24页 |
2.1.2 主要试剂 | 第24页 |
2.1.3 主要实验仪器 | 第24-25页 |
2.1.4 实验试剂的配制 | 第25-27页 |
2.2 实验步骤 | 第27-29页 |
2.2.1 血清AMCV抗体检测 | 第27页 |
2.2.2 血清ACCP抗体检测 | 第27页 |
2.2.3 RA患者FLSs的分离与培养 | 第27页 |
2.2.4 FLSs的传代培养 | 第27-28页 |
2.2.5 FLSs的冻存和复苏 | 第28页 |
2.2.6 免疫细胞化学法检测FLSs CitP和Vim的表达 | 第28页 |
2.2.7 免疫组织化学法检测RA滑膜组织CitP、Vim、IgG及C3的表达 | 第28-29页 |
2.2.8 统计学分析 | 第29页 |
2.3 实验结果 | 第29-32页 |
2.3.1 血清AMCV抗体、ACCP抗体的检测 | 第29-30页 |
2.3.2 RA滑膜组织CitP、Vim、IgG及C3的表达分析 | 第30-31页 |
2.3.3 CitP及Vim在RA FLSs中的表达 | 第31-32页 |
2.4 讨论 | 第32-36页 |
第三章 AMCV-IC的提取和鉴定及对RA FLSs增殖的影响 | 第36-49页 |
3.1 实验材料 | 第36-38页 |
3.1.1 研究对象 | 第36页 |
3.1.2 主要试剂 | 第36-38页 |
3.1.3 主要实验仪器 | 第38页 |
3.2 实验步骤 | 第38-42页 |
3.2.1 G蛋白免疫亲和层析法提取血清ICs | 第38页 |
3.2.2 BCA法检测蛋白质浓度 | 第38-39页 |
3.2.3 SDS-PAGE鉴定提取的ICs | 第39-40页 |
3.2.4 western blot检测CitP/Vim的表达 | 第40-41页 |
3.2.5 ACCP抗体测定 | 第41页 |
3.2.6 AMCV抗体测定 | 第41页 |
3.2.7 RA患者血清AMCV-IC刺激对FLSs增殖的影响 | 第41页 |
3.2.8 体外合成的AMCV-IC刺激对RA FLSs增殖的影响 | 第41-42页 |
3.2.9 统计学分析 | 第42页 |
3.3 实验结果 | 第42-45页 |
3.3.1 ICs的提取及鉴定 | 第42-43页 |
3.3.2 血清ICs中ACCP和AMCV抗体水平测定 | 第43页 |
3.3.3 血清ICs中CitP/Vim检测 | 第43页 |
3.3.4 RA患者血清AMCV-IC刺激对RA FLSs增殖的影响 | 第43-44页 |
3.3.5 体外合成的AMCV-IC刺激对RA FLSs增殖的影响 | 第44-45页 |
3.4 讨论 | 第45-49页 |
参考文献 | 第49-55页 |
瓜氨酸化波形蛋白在诱导RA自身免疫反应中的作用 | 第55-66页 |
引言 | 第55页 |
1 Cit-Ag刺激ACPAs产生 | 第55-57页 |
1.1 Cit-Ag在关节中的分布情况 | 第55-56页 |
1.2 胞内和胞外抗原 | 第56页 |
1.3 基因因素与ACPA产生 | 第56页 |
1.4 T细胞对Cit-Ag的反应 | 第56-57页 |
2 波形蛋白的生物功能 | 第57页 |
3 体外抗瓜氨酸化波形蛋白抗体的检测 | 第57-59页 |
3.1 抗Sa检测 | 第57-58页 |
3.2 抗突变型瓜氨酸化波形蛋白抗体检测 | 第58-59页 |
4 体内瓜氨酸化波形蛋白的检测 | 第59-60页 |
参考文献 | 第60-66页 |
攻读硕士学位期间发表论文 | 第66-67页 |
致谢 | 第67-68页 |