| 摘要 | 第1-3页 |
| Abstract | 第3-7页 |
| 文献综述 | 第7-17页 |
| 1β-葡聚糖概述 | 第7-8页 |
| 2 微生物制麦技术 | 第8-10页 |
| ·微生物制麦 | 第8-9页 |
| ·启动子菌株 | 第9页 |
| ·微生物制麦机理 | 第9-10页 |
| 3 β-葡聚糖酶概述 | 第10-15页 |
| ·β-葡聚糖酶的概念与作用 | 第10页 |
| ·β-葡聚糖酶的来源及种类 | 第10-11页 |
| ·β-葡聚糖酶的结构及其性质 | 第11-12页 |
| ·β-葡聚糖酶在工业中的应用 | 第12-14页 |
| ·酵母 β-1,3 葡聚糖的改性增溶研究的作用 | 第14-15页 |
| 4 β-葡聚糖酶的研究进展 | 第15-17页 |
| ·β-葡聚糖酶提取、纯化技术 | 第15页 |
| ·微生物菌株选育与酶活力改造 | 第15-16页 |
| ·基因工程 | 第16-17页 |
| 1.前言 | 第17-18页 |
| 2.材料与方法 | 第18-25页 |
| ·材料与仪器 | 第18-19页 |
| ·实验材料 | 第18页 |
| ·试剂 | 第18页 |
| ·仪器与设备 | 第18-19页 |
| ·培养基 | 第19页 |
| ·方法 | 第19-25页 |
| ·葡萄糖标准曲线绘制 | 第19-20页 |
| ·考马斯亮蓝法测定蛋白质标准曲线绘制 | 第20页 |
| ·β-1,3-1,4-葡聚糖酶的浸提方法 | 第20-21页 |
| ·β-1,3-1,4-葡聚糖酶的分离纯化方法 | 第21-23页 |
| ·β-1,3-1,4-葡聚糖酶的酶学性质测定方法 | 第23-25页 |
| 3.结果与分析 | 第25-40页 |
| ·β -1,3-1,4-葡聚糖酶浸提条件优化结果 | 第25-26页 |
| ·不同浸提液对酶浸提的影响 | 第25页 |
| ·不同 pH 缓冲液对酶浸提的影响 | 第25-26页 |
| ·浸提时间对酶浸提的影响 | 第26页 |
| ·β-1,3-1,4-葡聚糖酶的分离纯化结果 | 第26-29页 |
| ·硫酸铵饱和度对β-1,3-1,4-葡聚糖酶纯化效果的影响 | 第26-27页 |
| ·乙醇浓度对β-1,3-1,4-葡聚糖酶纯化效果的影响 | 第27-28页 |
| ·Sephadex G-100 层析对β-1,3-1,4-葡聚糖酶的纯化效果 | 第28页 |
| ·SDS-PAGE 测定纯度及β-1,3-1,4-葡聚糖酶分子量 | 第28-29页 |
| ·β-葡聚糖提取分离纯化的工艺流程 | 第29页 |
| ·β-1,3-1,4-葡聚糖酶的酶学性质研究结果 | 第29-40页 |
| ·酶反应时间对β-葡聚糖酶的影响 | 第29-30页 |
| ·β-1,3-1,4-葡聚糖酶最适反应温度的确定 | 第30-31页 |
| ·β-1,3-1,4-葡聚糖酶最适 pH 值的确定 | 第31页 |
| ·米氏常数 | 第31-32页 |
| ·Fe3+和尿素对该酶抑实验 | 第32-33页 |
| ·β-1,3-1,4-葡聚糖酶的热稳定性 | 第33页 |
| ·β-1 ,3-1,4 葡聚糖酶的酸碱稳定性 | 第33-34页 |
| ·不同物质对酶稳定性影响 | 第34-37页 |
| ·金属离子对β-1 ,3-1,4 葡聚糖酶活力的影响 | 第37-38页 |
| ·其他化合物对酶活力的影响 | 第38-39页 |
| ·β-葡聚糖酶的底物特异性 | 第39-40页 |
| 4 讨论 | 第40-43页 |
| 5 结论 | 第43-46页 |
| 参考文献 | 第46-48页 |
| 致谢 | 第48-49页 |
| 个人简介 | 第49-50页 |
| 导师简介 | 第50-51页 |
