| 中文摘要 | 第1-7页 |
| Abstract | 第7-12页 |
| 缩略语 | 第12-14页 |
| 第一章 前言 | 第14-36页 |
| 第一节 Th17细胞 | 第14-19页 |
| ·Th17细胞的发现 | 第14-15页 |
| ·Th17效应细胞谱系 | 第15页 |
| ·Th17细胞的分化调控 | 第15-17页 |
| ·Th17和Treg细胞分化的相互作用 | 第17-18页 |
| ·Th17和Th1/Th2细胞间的关系 | 第18-19页 |
| ·Th17细胞的稳定性 | 第19页 |
| 第二节 多发性硬化症及实验性自身免疫性脑脊髓炎 | 第19-29页 |
| ·概述 | 第19-21页 |
| ·多发性硬化症的免疫致病机制 | 第21-23页 |
| ·Th17细胞和多发性硬化症 | 第23-29页 |
| 第三节 microRNA | 第29-36页 |
| ·miRNAs的产生和功能 | 第29-31页 |
| ·miRNAs和免疫系统 | 第31-34页 |
| ·miRNA与MS、EAE | 第34-36页 |
| 第二章 材料与方法 | 第36-72页 |
| 第一节 实验材料 | 第36-44页 |
| ·实验动物 | 第36页 |
| ·主要试剂 | 第36-39页 |
| ·主要耗材、仪器 | 第39-40页 |
| ·菌种及细胞 | 第40页 |
| ·质粒 | 第40-42页 |
| ·常用溶液配制 | 第42-44页 |
| 第二节 实验方法 | 第44-72页 |
| ·MOG(35-55)多肽诱导EAE模型的建立 | 第44-45页 |
| ·组织切片、H&E染色及Luxol Fast Blue染色 | 第45-49页 |
| ·小鼠单淋巴细胞准备 | 第49-51页 |
| ·CD4+T细胞富集 | 第51页 |
| ·CD4+T细胞体外分化 | 第51-52页 |
| ·流式染色及检测 | 第52-54页 |
| ·表达载体构建及相关检测实验 | 第54-63页 |
| ·T细胞转染 | 第63页 |
| ·细胞增殖检测 | 第63-64页 |
| ·细胞凋亡检测 | 第64页 |
| ·慢病毒包装、浓缩及感染 | 第64-65页 |
| ·Western Blot免疫印迹 | 第65-68页 |
| ·IL-17A ELISA | 第68-69页 |
| ·定量PCR(qPCR)反应 | 第69-71页 |
| ·统计学分析 | 第71-72页 |
| 第三章 实验结果 | 第72-97页 |
| 第一节 miR-20b的表达检测 | 第72-74页 |
| ·miR-20b在EAE小鼠中表达下降 | 第72-73页 |
| ·miR-20b在体外分化Th17细胞中表达下降 | 第73-74页 |
| 第二节 预测、鉴定miR-20b的靶基因 | 第74-79页 |
| ·miR-20b的靶基因预测 | 第74页 |
| ·miR-20b抑制靶基因的表达 | 第74-79页 |
| 第三节 miR-20b在体外抑制Th17细胞的分化 | 第79-83页 |
| ·miR-20b在体外对Th17细胞增殖和凋亡的影响 | 第79-80页 |
| ·miR-20b在体外可以抑制Th17细胞的分化 | 第80-83页 |
| 第四节 miR-20b抑制EAE疾病进程 | 第83-90页 |
| ·慢病毒载体LV-ctrl及LV-miR-20b的表达检测 | 第83页 |
| ·慢病毒感染小鼠后miR-20b表达的检测 | 第83-85页 |
| ·慢病毒感染小鼠后免疫细胞构成的检测 | 第85-88页 |
| ·miR-20b抑制EAE发病进程 | 第88-90页 |
| 第五节 miR-20b在体内抑制Th17细胞的产生 | 第90-93页 |
| ·miR-20b可以减少CD4+T细胞在CNS中的浸润 | 第90-93页 |
| 第六节 miR-20b在体内通过抑制靶基因表达抑制Th17细胞的产生和EAE疾病进程 | 第93-97页 |
| ·miR-20b可以抑制EAE小鼠RORγt和STAT3的表达 | 第93-94页 |
| ·miR-20b可能通过抑制RORγt和STAT3的表达减缓小鼠EAE发病进程 | 第94-97页 |
| 第四章 讨论与总结 | 第97-100页 |
| 参考文献 | 第100-122页 |
| 致谢 | 第122-123页 |
| 个人简历在学期间发表的学术论文及研究成果 | 第123页 |
