| 摘要 | 第1-5页 |
| Abstract | 第5-11页 |
| 缩略词表 | 第11-13页 |
| 文献综述 | 第13-22页 |
| 1 概述 | 第13页 |
| 2 植物中 Ca~(2+)吸收和转运机制 | 第13-18页 |
| ·植物中 Ca~(2+)的吸收机制 | 第13-15页 |
| ·植物中 Ca~(2+)的转运机制 | 第15-18页 |
| ·蒸腾作用 | 第15页 |
| ·Ca~(2+)跨膜运输 | 第15-16页 |
| ·质膜 Ca~(2+)转运 | 第16-18页 |
| 3 植物中氮素与 Ca~(2+)的关系 | 第18-20页 |
| ·氮素的吸收和转运机制 | 第18-19页 |
| ·氮素对 Ca~(2+)吸收与转运的影响 | 第19-20页 |
| 4 植物中 Ca~(2+)与干旱胁迫的关系 | 第20-22页 |
| ·干旱胁迫对植物中 Ca~(2+)吸收和转运的影响 | 第20-21页 |
| ·Ca~(2+)信号参与植物抗旱性 | 第21-22页 |
| 引言 | 第22-24页 |
| 材料与方法 | 第24-33页 |
| 1 试验材料和试验材料的培养及处理方法 | 第24-26页 |
| ·试验材料 | 第24页 |
| ·试验材料的处理方法 | 第24-25页 |
| ·3 种 NO_3~-/NH_4~+比例处理 | 第24页 |
| ·不同 PEG-6000 浓度处理 | 第24-25页 |
| ·试验所需营养液的配制 | 第25-26页 |
| ·Hoagland 营养液的制备 | 第25页 |
| ·缺 N 营养液的制备 | 第25-26页 |
| ·3 种 NO_3~-/NH_4~+比例营养液的制备 | 第26页 |
| 2 试验方法 | 第26-33页 |
| ·生物量测定 | 第26-27页 |
| ·叶绿素（a, b 和 a+b）含量和 SPAD 值测定 | 第27页 |
| ·叶片净光合速率、蒸腾速率、气孔导度和胞间隙 CO_2浓度的测定 | 第27页 |
| ·叶片相对含水量测定 | 第27页 |
| ·叶片和根的呼吸速率测定 | 第27-28页 |
| ·叶片和根中 NO_3~-和 NH_4~+浓度测定 | 第28页 |
| ·叶片和根中 Ca~(2+)浓度测定 | 第28-29页 |
| ·叶片和根的组织结构观察和 Ca~(2+)细胞化学定位 | 第29-30页 |
| ·样品制备 | 第29页 |
| ·组织结构观察 | 第29页 |
| ·Ca~(2+)细胞化学定位 | 第29-30页 |
| ·Ca~(2+)-ATPase 细胞化学定位 | 第30-31页 |
| ·‘平邑甜茶’根的原生质体分离和提取 | 第31页 |
| ·‘平邑甜茶’根的原生质体质膜 Ca~(2+)通道检测 | 第31页 |
| ·叶片 RNA 提取 | 第31-32页 |
| ·叶片中 CAX1 和 CAX3 基因定量表达 | 第32页 |
| ·数据处理 | 第32-33页 |
| 结果与分析 | 第33-86页 |
| 第一部分 氮素形态对‘平邑甜茶’幼苗生长和 Ca~(2+)吸收分布影响 | 第33-63页 |
| 1 3种 NO_3~-/NH_4~+比例处理对‘平邑甜茶’幼苗生长状态和生物量影响 | 第33-35页 |
| ·生长状况 | 第33-34页 |
| ·生物量 | 第34-35页 |
| 2 3种 NO_3~-/NH_4~+比例处理对‘平邑甜茶’幼苗 NO_3~-和 NH_4~+浓度影响 | 第35-36页 |
| 3 3种 NO_3~-/NH_4~+比例处理对‘平邑甜茶’幼苗叶绿素和叶片结构影响 | 第36-38页 |
| ·叶绿素含量 | 第36-37页 |
| ·叶片结构 | 第37-38页 |
| 4 3种 NO_3~-/NH_4~+比例处理对‘平邑甜茶’幼苗呼吸速率影响 | 第38-39页 |
| 5 3种 NO_3~-/NH_4~+比例处理对‘平邑甜茶’幼苗根系结构影响 | 第39-41页 |
| ·根尖分生区细胞结构 | 第39-40页 |
| ·根尖成熟区细胞结构 | 第40-41页 |
| 6 3 种 NO_3~-/NH_4~+比例处理对‘平邑甜茶’幼苗 Ca~(2+)浓度影响 | 第41-43页 |
| 7 3 种 NO_3~-/NH_4~+比例处理对‘平邑甜茶’幼苗 Ca~(2+)细胞分布影响 | 第43-49页 |
| ·叶片 Ca~(2+)细胞定位 | 第43-45页 |
| ·根尖分生区 Ca~(2+)细胞定位 | 第45-46页 |
| ·根尖成熟区 Ca~(2+)细胞定位 | 第46-49页 |
| 8 3 种 NO_3~-/NH_4~+比例处理对‘平邑甜茶’幼苗 Ca~(2+)-ATPase 活性影响 | 第49-56页 |
| ·叶片 Ca~(2+)-ATPase 细胞定位 | 第49-51页 |
| ·根尖分生区 Ca~(2+)-ATPase 细胞定位 | 第51-52页 |
| ·根尖成熟区 Ca~(2+)-ATPase 细胞定位 | 第52-56页 |
| 9 3 种 NO_3~-/NH_4~+比例处理对‘平邑甜茶’幼苗叶片 CAX1 和 CAX3 基因表达影响 | 第56-57页 |
| 讨论 | 第57-63页 |
| 1 3 种 NO_3~-/NH_4~+比例处理影响‘平邑甜茶’幼苗的生长发育 | 第57页 |
| 2 3 种 NO_3~-/NH_4~+比例处理影响叶片结构和光合作用 | 第57-58页 |
| 3 3 种 NO_3~-/NH_4~+比例处理影响呼吸作用 | 第58页 |
| 4 3 种 NO_3~-/NH_4~+比例处理影响离子吸收和根结构变化 | 第58-59页 |
| 5 3 种 NO_3~-/NH_4~+比例处理影响 Ca~(2+)分布变化 | 第59-60页 |
| 6 3 种 NO_3~-/NH_4~+比例处理影响 Ca~(2+)转运 | 第60-63页 |
| 第二部分 干旱胁迫对‘平邑甜茶’幼苗生长和 Ca~(2+)吸收分布影响 | 第63-86页 |
| 1 不同 PEG-6000 浓度处理对‘平邑甜茶’幼苗生长状态、叶片生长状态和生物量影响 | 第63-66页 |
| ·生长状况 | 第63-64页 |
| ·叶片生长状态 | 第64-65页 |
| ·生物量 | 第65-66页 |
| 2 不同 PEG-6000 浓度处理对‘平邑甜茶’叶片相对含水量影响 | 第66-67页 |
| 3 不同 PEG-6000 浓度处理对‘平邑甜茶’叶绿素含量和 SPAD 值影响 | 第67-68页 |
| 4 不同 PEG-6000 浓度处理对‘平邑甜茶’幼苗光合作用影响 | 第68-69页 |
| 5 不同 PEG-6000 浓度处理对‘平邑甜茶’幼苗叶片呼吸速率影响 | 第69-70页 |
| 6 不同 PEG-6000 浓度处理对‘平邑甜茶’幼苗叶片结构影响 | 第70-71页 |
| 7 不同 PEG-6000 浓度处理对‘平邑甜茶’叶片 Ca~(2+)浓度影响 | 第71-72页 |
| 8 PEG-6000 浓度处理对‘平邑甜茶’根原生质体细胞膜上钙通道活性影响 | 第72-74页 |
| 9 不同 PEG-6000 浓度处理对‘平邑甜茶’幼苗叶片 Ca~(2+)细胞分布影响 | 第74-78页 |
| 10 不同 PEG-6000 浓度处理对‘平邑甜茶’幼苗叶片 Ca~(2+)-ATPase 活性影响 | 第78-82页 |
| 讨论 | 第82-86页 |
| 1 干旱胁迫影响了‘平邑甜茶’幼苗的生长发育、光合作用和呼吸作用的影响 | 第82-84页 |
| 2 干旱胁迫影响了‘平邑甜茶’幼苗内 Ca~(2+)的分布与转运 | 第84-86页 |
| 结论 | 第86-87页 |
| 参考文献 | 第87-99页 |
| 致谢 | 第99-100页 |
| 攻读学位期间取得的科研成果清单 | 第100页 |
