摘要 | 第1-4页 |
ABSTRACT | 第4-9页 |
第1章 综述 | 第9-17页 |
·天然蛋白多肽类物质抗肿瘤研究进展 | 第9-15页 |
·抑制细胞的增殖 | 第9页 |
·调节细胞的氧化状态 | 第9-10页 |
·阻滞细胞周期 | 第10-11页 |
·调节免疫功能 | 第11页 |
·影响血管生成 | 第11-13页 |
·诱导凋亡 | 第13-14页 |
·诱导自噬 | 第14页 |
·影响离子通道的活性 | 第14页 |
·其它 | 第14-15页 |
·壁虎抗肿瘤作用研究现状 | 第15-17页 |
·壁虎复方制剂抗肿瘤作用 | 第15页 |
·干壁虎及炮制品抗肿瘤作用 | 第15-16页 |
·壁虎水提物抗肿瘤作用 | 第16页 |
·壁虎酶解物抗肿瘤作用 | 第16页 |
·我们课题组的前期研究 | 第16-17页 |
第2章 引言 | 第17-18页 |
第3章 材料与方法 | 第18-28页 |
·实验材料 | 第18-21页 |
·细胞 | 第18页 |
·动物 | 第18页 |
·试剂及药品 | 第18-19页 |
·仪器 | 第19页 |
·试剂的配制 | 第19-21页 |
·实验方法 | 第21-28页 |
·壁虎醇提物(Ⅱ)的制备 | 第21页 |
·壁虎醇提物(Ⅱ)的分离、分析 | 第21-22页 |
·MTT 检测 GEE (Ⅱ)对细胞增殖的抑制作用 | 第22-23页 |
·Hoechst 33258 荧光染色检测 GEE (Ⅱ)对细胞核形态的影响 | 第23页 |
·小鼠腋下和肾包膜下移植瘤模型的建立 | 第23-24页 |
·HE 染色观察移植瘤组织的形态学变化 | 第24页 |
·ELISA 检测荷瘤小鼠血清中 IL-6、TNF-α蛋白的含量 | 第24-25页 |
·Western Blot 检测 VEGF、caspase-3 蛋白的表达 | 第25-27页 |
·统计分析 | 第27-28页 |
第4章 结果 | 第28-33页 |
·提取流程及条件对壁虎醇提物活性的影响 | 第28页 |
·不同提取方法所得壁虎醇提物的活性 | 第28页 |
·旋转蒸发所用温度对 GEE (Ⅱ)活性的影响 | 第28页 |
·冻融对 GEE (Ⅱ)活性的影响 | 第28页 |
·GEE (Ⅱ)在体外的抗肿瘤作用 | 第28-29页 |
·GEE (Ⅱ)体外对细胞增殖的抑制作用 | 第28-29页 |
·GEE (Ⅱ)在体外对细胞核形态的影响 | 第29页 |
·GEE (Ⅱ)在体外对 Hep2 细胞中 VEGF、caspase-3 蛋白表达的影响 | 第29页 |
·GEE (Ⅱ)在肾包膜下移植瘤模型小鼠中的抗肿瘤作用 | 第29-31页 |
·GEE (Ⅱ)对肾包膜下移植瘤生长的抑制作用 | 第29页 |
·GEE (Ⅱ)对肾包膜下移植瘤组织的形态学影响 | 第29-30页 |
·GEE (Ⅱ)对肾包膜下移植瘤模型小鼠血清中 IL-6、TNF-α含量的影响 | 第30-31页 |
·GEE (Ⅱ)在腋下移植瘤模型小鼠中的抗肿瘤作用 | 第31-32页 |
·GEE (Ⅱ)对腋下移植瘤生长的抑制作用 | 第31页 |
·GEE (Ⅱ)对腋下移植瘤模型小鼠血清中 IL-6、TNF-α含量的影响 | 第31-32页 |
·GEE (Ⅱ)对腋下移植瘤中 VEGF、caspase-3 蛋白表达的影响 | 第32页 |
·凝胶过滤柱层析对 GEE (Ⅱ)分离结果 | 第32页 |
·GEGA 在体外对细胞增殖的抑制作用 | 第32页 |
·HPLC 对 GEGA 的分析 | 第32-33页 |
第5章 讨论 | 第33-40页 |
·壁虎醇提物(Ⅱ)的提取、分离 | 第33-34页 |
·壁虎醇提物(Ⅱ)在体内、外的抗肿瘤作用 | 第34-40页 |
第6章 结论 | 第40-41页 |
参考文献 | 第41-48页 |
缩略语词汇表 | 第48-51页 |
附录 | 第51-57页 |
致谢 | 第57-58页 |
攻读硕士学位期间的研究成果 | 第58页 |