| 摘要 | 第1-5页 |
| Abstract | 第5-6页 |
| 目录 | 第6-10页 |
| 缩略词表 | 第10-11页 |
| 第一章 文献综述 | 第11-32页 |
| ·低温对植物的影响 | 第11-13页 |
| ·低温对植物的危害 | 第12页 |
| ·冷驯化 | 第12-13页 |
| ·植物响应低温的信号通路 | 第13-22页 |
| ·植物对低温的感知 | 第13页 |
| ·低温相关的钙离子信号通路 | 第13-15页 |
| ·依赖于CBF的信号途径 | 第15-16页 |
| ·不依赖于CBF的信号途径 | 第16-18页 |
| ·低温信号途径中的转录后调控 | 第18-19页 |
| ·低温信号途径中的翻译后调控 | 第19-20页 |
| ·部分植物激素与低温的关系 | 第20-22页 |
| ·植物的防卫反应 | 第22-29页 |
| ·植物的免疫系统 | 第22-23页 |
| ·植物的R蛋白 | 第23-25页 |
| ·TIR-X和TIR-NB蛋白 | 第25-27页 |
| ·CC-X和CC-NB蛋白 | 第27-29页 |
| ·温度对免疫反应的调节 | 第29-31页 |
| ·温度对植物的免疫反应的影响 | 第29-30页 |
| ·温度对R蛋白亚细胞定位的影响 | 第30页 |
| ·SA与ABA对免疫反应的影响 | 第30-31页 |
| ·本研究的目的和意义 | 第31-32页 |
| 第二章 实验材料和方法 | 第32-45页 |
| ·实验材料 | 第32-33页 |
| ·植物材料 | 第32页 |
| ·菌株材料 | 第32页 |
| ·主要载体 | 第32-33页 |
| ·主要工具酶与试剂 | 第33页 |
| ·实验仪器、培养基和试剂配制 | 第33-37页 |
| ·主要培养基配制 | 第33-34页 |
| ·转化拟南芥试剂 | 第34页 |
| ·抗生素配制 | 第34页 |
| ·烟草瞬时表达注射悬浮液 | 第34页 |
| ·Western blot试剂 | 第34-36页 |
| ·实验仪器 | 第36-37页 |
| ·其它常用溶液配制 | 第37页 |
| ·植物材料培养基质 | 第37页 |
| ·实验方法 | 第37-45页 |
| ·植物材料培养 | 第37页 |
| ·植物基因组DNA提取 | 第37-38页 |
| ·植物总RNA的提取 | 第38页 |
| ·反转录 | 第38页 |
| ·实时荧光定量聚合酶链式反应(Real-time PCR) | 第38-39页 |
| ·拟南芥离子渗漏率测定 | 第39页 |
| ·台盼蓝(Trypan blue)染色 | 第39页 |
| ·DAB染色 | 第39页 |
| ·SA提取和测定 | 第39-40页 |
| ·拟南芥转基因 | 第40页 |
| ·PCR扩增 | 第40页 |
| ·PCR和酶切产物回收 | 第40-41页 |
| ·质粒DNA提取 | 第41-42页 |
| ·质粒和连接产物的热击转化 | 第42页 |
| ·大肠杆菌超级感受态的制备 | 第42页 |
| ·农杆菌感受态的制备 | 第42页 |
| ·电击转化农杆菌感受态 | 第42-43页 |
| ·本实验所用到的载体构建 | 第43页 |
| ·植物蛋白提取 | 第43页 |
| ·Western blot | 第43页 |
| ·拟南芥原生质体瞬时表达系统 | 第43-44页 |
| ·chs1-2的EMS诱变 | 第44-45页 |
| 第三章 实验结果与分析 | 第45-77页 |
| ·突变体chs1-2的性状分析 | 第45-49页 |
| ·chs1-2的冷敏感表型分析 | 第45-46页 |
| ·chs1-2的细胞死亡和活性氧积累 | 第46-48页 |
| ·chs1-2的PR基因表达状况和水杨酸的积累 | 第48-49页 |
| ·突变体chs1-2活性氧相关基因的表达 | 第49-50页 |
| ·CHS1的图位克隆 | 第50-59页 |
| ·CHS1的定位与生物信息学分析 | 第50-51页 |
| ·CHS1的基因组互补 | 第51-55页 |
| ·冷敏感突变体chs1具有剂量依赖效应 | 第55-57页 |
| ·CHS1基因内抑制子回复突变体chs1-2的冷敏感表型 | 第57-59页 |
| ·CHS1的表达模式分析 | 第59-61页 |
| ·CHS1的组织表达模式 | 第59-60页 |
| ·CHS1的亚细胞定位 | 第60-61页 |
| ·过表达CHS1-TIR和CHS1-NB结构域植株的表型和性状分析 | 第61-65页 |
| ·过表达CHS1-TIR和CHS1-NB结构域植株的表型分析 | 第61-63页 |
| ·过表达CHS1-TIR和CHS1-NB结构域植株的细胞死亡和过氧化氢积累分析 | 第63-64页 |
| ·过表达CHS1-TIR和CHS1-NB结构域植株PR基因的表达分析 | 第64-65页 |
| ·CHS1下游调控因子的分析 | 第65-67页 |
| ·chs1-2的冷敏感表型部分依赖于SA | 第65页 |
| ·chs1-2的冷敏感表型完全依赖于EDS1或PAD4 | 第65-67页 |
| ·CHS1的稳定性分析 | 第67-72页 |
| ·CHS1转录水平稳定性分析 | 第67-68页 |
| ·CHS1蛋白的稳定性分析 | 第68-69页 |
| ·CHS1 TIR和NB结构域的稳定性分析 | 第69页 |
| ·高温对CHS1、TIR和NB结构域的影响 | 第69-70页 |
| ·CHS1-TIR的降解不依赖于26S蛋白酶体途径 | 第70-72页 |
| ·CHS1抑制子的筛选 | 第72-77页 |
| ·chs1-2回复突变体的筛选 | 第72-75页 |
| ·SOC1的图位克隆 | 第75-77页 |
| 第四章 讨论与展望 | 第77-82页 |
| ·突变蛋白chs1没有改变CHS1的亚细胞定位 | 第77页 |
| ·突变体chs1的冷敏感表型可能有TIR-NB-LRR类型R蛋白的参与 | 第77页 |
| ·突变体chs1是一个隐性功能有缺陷的突变体 | 第77页 |
| ·CHS1的转录后水平受到温度的调控 | 第77-78页 |
| ·CHS1是植物生长动态平衡的调节子 | 第78页 |
| ·CHS1可能的工作模型 | 第78-80页 |
| ·不同研究组对CHS1功能研究的比较 | 第80-81页 |
| ·CHS1的表达模式 | 第80页 |
| ·CHS1的亚细胞定位 | 第80页 |
| ·chs1的冷敏感表型与SA的关系 | 第80-81页 |
| ·展望 | 第81-82页 |
| 第五章 结论 | 第82-83页 |
| ·结论 | 第82-83页 |
| 参考文献 | 第83-99页 |
| 附录 | 第99-101页 |
| 致谢 | 第101-103页 |
| 个人简历 | 第103页 |
