| 摘要 | 第1-9页 |
| Abstract | 第9-11页 |
| 1 前言 | 第11-22页 |
| ·研究的目的与意义 | 第11页 |
| ·文献综述 | 第11-21页 |
| ·春化作用研究现状 | 第11-14页 |
| ·DNA 甲基化研究进展 | 第14-19页 |
| ·SAMS 基因的研究进展 | 第19-20页 |
| ·FLC 基因的研究进展 | 第20页 |
| ·FCA 基因的研究进展 | 第20-21页 |
| ·主要研究内容 | 第21页 |
| ·本试验技术路线 | 第21-22页 |
| 2 材料与方法 | 第22-32页 |
| ·试验材料 | 第22-23页 |
| ·植物材料 | 第22页 |
| ·主要分子生物学及生化试剂 | 第22页 |
| ·主要试验仪器 | 第22-23页 |
| ·主要软件 | 第23页 |
| ·植物材料的处理、取样及冬性调查 | 第23页 |
| ·试验方法 | 第23-32页 |
| ·MSAP 法检测基因组甲基化 | 第23-27页 |
| ·大白菜 SAMS 基因及开花相关基因的半定量 RT-PCR 表达分析 | 第27-30页 |
| ·SAMS、FLC1 基因的实时荧光定量 RT-PCR 表达分析 | 第30-31页 |
| ·特定位点的 DNA 甲基化水平分析 | 第31-32页 |
| 3 结果与分析 | 第32-46页 |
| ·不同处理的大白菜冬性调查 | 第32-33页 |
| ·MSAP 检测基因组甲基化 | 第33-38页 |
| ·大白菜基因组 DNA 的提取 | 第33-34页 |
| ·预扩增和选择性扩增产物的琼脂糖电泳检测 | 第34-35页 |
| ·不同处理的大白菜基因组甲基化类型 | 第35页 |
| ·不同处理的大白菜基因组 DNA 甲基化水平差异 | 第35-36页 |
| ·不同处理的大白菜基因组 DNA 甲基化模式差异 | 第36-38页 |
| ·半定量 RT-PCR 表达分析 | 第38-41页 |
| ·大白菜总 RNA 的提取 | 第38-39页 |
| ·SAMS 基因在不同处理植株上的表达量 | 第39页 |
| ·FLC1 基因在不同处理植株上的表达量 | 第39-40页 |
| ·FLC2 基因在不同处理植株上的表达量 | 第40页 |
| ·FCA 基因在不同处理植株上的表达量 | 第40-41页 |
| ·实时荧光定量 RT-PCR 表达分析 | 第41-44页 |
| ·熔解曲线的建立 | 第41-42页 |
| ·不同处理植株上 SAMS 基因的实时荧光定量 RT-PCR 表达分析 | 第42-43页 |
| ·不同处理植株上 FLC1 基因的实时荧光定量 RT-PCR 表达分析 | 第43-44页 |
| ·FLC1 基因启动子区域的 DNA 甲基化 | 第44-46页 |
| 4 讨论 | 第46-50页 |
| ·MSAP 检测基因组 DNA 甲基化 | 第46页 |
| ·不同处理的大白菜基因组甲基化水平变化 | 第46-47页 |
| ·不同处理的大白菜抽薹相关基因的表达分析 | 第47页 |
| ·半定量 RT-PCR 与荧光定量 RT-PCR | 第47-48页 |
| ·FLC1 基因启动子区域甲基化分析 | 第48-49页 |
| ·本试验的创新点 | 第49-50页 |
| 5 结论 | 第50-51页 |
| 致谢 | 第51-52页 |
| 参考文献 | 第52-59页 |
| 附录 | 第59-62页 |
| 附录 A | 第59-60页 |
| 附录 B | 第60-62页 |
| 攻读学位期间发表的学术论文 | 第62页 |
