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尖尾芋水提物抑制小鼠乳腺癌生长与诱导THP-1细胞分化作用

摘要第1-10页
ABSTRACT第10-20页
目录第20-24页
第一部分 尖尾芋水提物制备及多糖纯化工艺第24-36页
 1 材料、试剂与仪器第24-25页
   ·药材第24页
   ·试剂第24-25页
   ·仪器第25页
 2 方法第25-28页
   ·尖尾芋提取第25页
   ·糖含量测定第25-26页
   ·粗提物蛋白质含量测定第26页
   ·多糖的组分分析第26页
   ·尖尾芋多糖的初步纯化第26-27页
   ·DEAE-52柱层析第27页
   ·Sephadex G-200柱层析第27页
   ·尖尾芋多糖的纯度鉴定第27-28页
   ·纯化后多糖中蛋白质含量测定第28页
   ·尖尾芋多糖的理化性质第28页
 3 结果第28-34页
   ·尖尾芋水提得率第28页
   ·尖尾芋总多糖含量第28-29页
   ·尖尾芋总蛋白的含量第29-30页
   ·尖尾芋多糖的单糖组成分析第30-31页
   ·DEAE-52柱层析纯化尖尾芋多糖第31-32页
   ·Sephadex G-200柱层析纯化尖尾芋多糖第32-33页
   ·尖尾芋多糖的纯度鉴定第33页
   ·尖尾芋多糖的理化性质第33-34页
 4 讨论第34-35页
 5 参考文献第35-36页
第二部分 尖尾芋水提物抗小鼠肿瘤作用第36-60页
 1 材料、试剂与仪器第36-37页
   ·药材、细胞株与实验动物第36页
   ·主要试剂与配制第36页
   ·主要实验仪器第36-37页
 2 方法第37-41页
   ·尖尾芋小鼠急性毒性实验第37页
   ·乳腺癌动物模型的建立与给药第37-38页
   ·肿瘤体积变化第38页
   ·尖尾芋对肿瘤重量、脾指数与胸腺指数的影响第38页
   ·HE染色观察肿瘤组织的形态改变第38-39页
   ·ELISA法检测血清内IL-2、IL-10、IFN-γ、TNF-α、TGF-β1含量第39页
   ·尖尾芋对正常小鼠脾细胞活力影响第39-40页
   ·尖尾芋对正常小鼠腹腔渗出细胞活力影响第40页
   ·尖尾芋对乳腺癌细胞的体外抑制作用第40页
   ·小鼠生存期观察第40-41页
   ·统计处理第41页
 3 结果第41-53页
   ·小鼠急性毒理实验第41页
   ·尖尾芋抑制接种肿瘤在体内生长速率第41-42页
   ·尖尾芋提升小鼠的脾脏指数、抑制肿瘤生长,不影响胸腺指数第42-45页
   ·肿瘤组织HE染色第45-46页
   ·对荷瘤小鼠血清IL-2、IL-10、TNF-α、INF-γ与TGF-β1含量的影响第46-49页
   ·尖尾芋对4T1细胞体外增殖无影响第49-50页
   ·尖尾芋水提物体外促进正常小鼠脾细胞生长活力第50-51页
   ·尖尾芋促进正常小鼠腹腔渗出细胞生长第51-52页
   ·小鼠生存期观察第52-53页
 4 讨论第53-57页
 5 参考文献第57-60页
第三部分 尖尾芋水提物诱导单核巨噬细胞分化第60-82页
 1 材料、试剂与仪器第60-61页
   ·药材与细胞株第60-61页
   ·主要试剂第61页
   ·主要仪器第61页
 2 方法第61-63页
   ·尖尾芋水提物中内毒素含量检测第61页
   ·细胞培养与分化诱导第61-62页
   ·对细胞贴壁率与抑制率影响第62页
   ·对细胞表面标记物CD14与CD11b表达的影响第62页
   ·细胞因子TNF-α与IL-1β的检测第62页
   ·流式细胞仪检测细胞周期第62页
   ·尖尾芋诱导单核巨噬细胞分化的相关细胞趋化因子和细胞因子第62-63页
   ·统计处理第63页
 3 结果第63-72页
   ·THP-1经尖尾芋处理后细胞形态的变化第63-65页
   ·尖尾芋对THP-1细胞生长活性的影响第65页
   ·尖尾芋诱导THP-1细胞产生CD11b与CD14第65-67页
   ·尖尾芋诱导THP-1细胞产生白介素-1β与肿瘤坏死因子-α第67-69页
   ·尖尾芋影响THP-1细胞生长周期第69页
   ·尖尾芋诱导单核巨噬细胞分化的相关趋化因子和细胞因子第69-72页
 4 讨论第72-76页
 5 参考文献第76-82页
全文总结第82-84页
综述第84-113页
 参考文献第101-113页
符号说明第113-114页
博士期间发表或待发表论文第114-115页
致谢第115-117页
研究生毕业论文统计证明第117页

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