| 摘要 | 第1-4页 |
| Abstract | 第4-8页 |
| 1 绪论 | 第8-25页 |
| ·花发育研究现状 | 第8-18页 |
| ·开花决定阶段 | 第9页 |
| ·花的发端阶段 | 第9-10页 |
| ·花器官的发育阶段 | 第10-17页 |
| ·促进植物开花途径 | 第17-18页 |
| ·调控花发育的基因 | 第18-19页 |
| ·MADS-box基因及MADS-box转录因子 | 第19-23页 |
| ·MADS-box基因 | 第19-21页 |
| ·MADS-box蛋白转录因子 | 第21-22页 |
| ·MADS-box基因的功能和调节机理 | 第22-23页 |
| ·本研究的目的意义 | 第23-24页 |
| ·技术路线 | 第24-25页 |
| 2 BpMADS3基因植物表达载体的构建及对烟草的遗传转化 | 第25-38页 |
| ·实验材料 | 第25-28页 |
| ·植物材料 | 第25页 |
| ·菌株和质粒 | 第25页 |
| ·酶类及主要试剂 | 第25-28页 |
| ·实验仪器 | 第28页 |
| ·实验方法 | 第28-34页 |
| ·BpMADS3基因植物表达载体的构建 | 第28页 |
| ·菌种的活化保存 | 第28-29页 |
| ·三亲交配法将中间表达载体(含BpMADS3基因)转入农杆菌 | 第29页 |
| ·工程菌液的制备 | 第29页 |
| ·根癌农杆菌介导的外源基因的遗传转化 | 第29-30页 |
| ·转BpMADS3基因植株的移栽 | 第30页 |
| ·转基因烟草的分子检测 | 第30-34页 |
| ·结果分析 | 第34-37页 |
| ·目的基因的获得 | 第34页 |
| ·植物表达载体pROKII的双酶切 | 第34页 |
| ·重组质粒的获得 | 第34-35页 |
| ·EHA105(pMA)的获得 | 第35页 |
| ·转BpMADS3基因烟草的PCR检测 | 第35-36页 |
| ·转BpMADS3基因烟草转录水平的检测 | 第36-37页 |
| ·本章小结 | 第37-38页 |
| 3 转BpMADS3基因烟草当代(T_0)开花结实的分析 | 第38-46页 |
| ·实验材料 | 第38页 |
| ·实验方法 | 第38页 |
| ·转BpMADS3基因烟草当代(T_0)开花结实 | 第38页 |
| ·数据分析 | 第38页 |
| ·结果分析 | 第38-45页 |
| ·BpMADS3基因对烟草首朵花开放时间的影响 | 第38-39页 |
| ·BpMADS3基因对烟草株高的影响 | 第39-41页 |
| ·BpMADS3基因对烟草花蕊长度的影响 | 第41-43页 |
| ·BpMADS3基因对烟草平均结实量的影响 | 第43-44页 |
| ·BpMADS3基因对烟草花瓣颜色的影响 | 第44-45页 |
| ·本章小结 | 第45-46页 |
| 4 转基因烟草子一代(T_1)的遗传稳定性分析及开花结实的分析 | 第46-54页 |
| ·实验材料 | 第46页 |
| ·实验方法 | 第46页 |
| ·转基因烟草T_1代的Kan筛选及PCR检测 | 第46页 |
| ·转基因烟草T_1代的开花结实的分析 | 第46页 |
| ·数据分析 | 第46页 |
| ·结果分析 | 第46-53页 |
| ·转基因烟草T_1代的Kan筛选及PCR检测 | 第46-47页 |
| ·转基因烟草T_1代的开花结实的分析 | 第47-53页 |
| ·本章小结 | 第53-54页 |
| 5 转基因烟草子二代(T_2)的开花结实的分析 | 第54-60页 |
| ·实验材料 | 第54页 |
| ·实验方法 | 第54页 |
| ·转基因烟草子二代(T_2)的开花结实 | 第54页 |
| ·数据分析 | 第54页 |
| ·结果分析 | 第54-59页 |
| ·转基因烟草T_2代的获得及PCR检测 | 第54-55页 |
| ·转基因烟草T_2代的开花的分析 | 第55-59页 |
| ·本章小结 | 第59-60页 |
| 6 讨论 | 第60-64页 |
| ·白桦BpMADS3基因的组成型表达对转基因烟草提早成花与大量结实的作用 | 第60-61页 |
| ·白桦BpMADS3基因的组成型表达对转基因烟草生长的影响 | 第61页 |
| ·转BpMADS3基因植株的表现差异 | 第61-62页 |
| ·研究展望 | 第62-64页 |
| 7 结论 | 第64-65页 |
| 参考文献 | 第65-79页 |
| 附录 | 第79-85页 |
| 攻读学位期间发表的学术论文 | 第85-86页 |
| 致谢 | 第86-87页 |
