| 摘要 | 第1-6页 |
| Abstract | 第6-10页 |
| 1 引言 | 第10-17页 |
| ·毛色遗传的研究现状 | 第10-11页 |
| ·MC1R基因的研究 | 第11-13页 |
| ·MC1R基因的作用机理 | 第11页 |
| ·MC1R基因的研究现状 | 第11-13页 |
| ·试验中所涉及的分子标记方法 | 第13-14页 |
| ·单核苷酸多态性(Single Nucleotide Polymorphism,缩写SNP) | 第13页 |
| ·限制性片断长度多态性(Restriction Fragment Length Polymorphism缩写RFLP) | 第13-14页 |
| ·单链构象多态性(Single-Strand Conformational Polymorphism缩写SSCP) | 第14页 |
| ·高GC含量PCR | 第14-16页 |
| ·本研究目的意义及主要内容 | 第16-17页 |
| ·本研究目的意义 | 第16页 |
| ·研究的主要内容 | 第16-17页 |
| 2 材料与方法 | 第17-27页 |
| ·实验材料 | 第17-20页 |
| ·试验猪样品来源及采样方法 | 第17页 |
| ·药品种类 | 第17页 |
| ·试剂的配制及保存 | 第17-18页 |
| ·主要仪器设备 | 第18-19页 |
| ·主要分析工具软件及在线分析网站 | 第19-20页 |
| ·试验方法 | 第20-27页 |
| ·猪耳及尾组织DNA的提取 | 第20-21页 |
| ·编码区序列比对 | 第21页 |
| ·引物的设计与合成 | 第21页 |
| ·PCR扩增 | 第21-23页 |
| ·PCR-RFLP确定MCIR基因编码区基因型 | 第23-24页 |
| ·PCR-SSCP确定MCIR基因编码区基因型 | 第24-26页 |
| ·不同毛色品种猪5'UTR多态性筛查 | 第26页 |
| ·物种间MCIR基因5'UTR系统聚类分析 | 第26-27页 |
| 3 结果分析 | 第27-36页 |
| ·猪样品DNA提取结果 | 第27页 |
| ·编码区序列比对结果 | 第27-28页 |
| ·PCR-RFLP确定编码区基因型 | 第28-30页 |
| ·PCR扩增结果 | 第28-29页 |
| ·G1197A和G1554A突变位位点PCR-RFLP分析结果 | 第29-30页 |
| ·PCR-SSCP确定MC1R基因编码区基因型 | 第30-32页 |
| ·PCR扩增结果 | 第30页 |
| ·nt894insCCC和C1318T突变位点SSCP分析结果 | 第30-31页 |
| ·序列测定 | 第31-32页 |
| ·长白、大自、杜洛克猪MCIR基因5'UTR多态性分析 | 第32-34页 |
| ·PCR扩增结果 | 第32页 |
| ·扩增片断序列的测定 | 第32-33页 |
| ·PCR-RFLP确定MC1R基因5'UTR基因型 | 第33-34页 |
| ·物种间MC1R基因遗传距离和系统聚类图 | 第34-36页 |
| ·不同山羊和绵羊品种5'UTR扩增 | 第34页 |
| ·不同毛色品种山羊、绵羊5'UTR扩增片断序列的测定 | 第34-35页 |
| ·物种间MC1R基因5'UTR系统聚类分析结果 | 第35-36页 |
| 4 讨论 | 第36-42页 |
| ·样品DNA的提取 | 第36页 |
| ·PCR扩增 | 第36-39页 |
| ·模板的质量 | 第36页 |
| ·引物的设计、使用和保存 | 第36-37页 |
| ·引物和dNTP的浓度 | 第37页 |
| ·退火温度 | 第37页 |
| ·退火时间 | 第37页 |
| ·循环数 | 第37-38页 |
| ·高GC含量PCR | 第38-39页 |
| ·影响SSCP的因素 | 第39-40页 |
| ·PCR扩增产物 | 第39页 |
| ·聚丙烯酰胺凝胶成分和浓度 | 第39-40页 |
| ·电泳条件 | 第40页 |
| ·MC1R基因多态与猪毛色的关系 | 第40-41页 |
| ·MC1R基因多态 | 第40页 |
| ·G668C、C1318T和G1554A突变与杜洛克的红毛色存在相关 | 第40-41页 |
| ·nt894insCC与长白、大白白毛色存在相关 | 第41页 |
| ·5'UTRG296A,A544G和T129C突变可能与萨伏克黑头和四肢表型存在相关 | 第41-42页 |
| 5 结论 | 第42-43页 |
| 参考文献 | 第43-46页 |
| 在读期间发表的论文 | 第46-52页 |
| 作者简历 | 第52-53页 |
| 致谢 | 第53页 |
