| 摘要 | 第1-8页 |
| Abstract | 第8-10页 |
| 前言 | 第10-15页 |
| 一、试管苗玻璃化的研究进展 | 第10-12页 |
| 二、RAPD技术的研究进展 | 第12-13页 |
| 三、SCAR标记 | 第13-14页 |
| 四、本文的研究目的和意义 | 第14-15页 |
| 1 材料与方法 | 第15-24页 |
| ·试验材料 | 第15-16页 |
| ·试验材料 | 第15页 |
| ·主要试剂及仪器 | 第15-16页 |
| ·试验方法 | 第16-24页 |
| ·生理生化指标的测定 | 第16-18页 |
| ·组织含水量的测定 | 第16页 |
| ·叶绿素含量的测定 | 第16-17页 |
| ·可溶性总糖和还原糖含量的测定 | 第17-18页 |
| ·过氧化物酶活性的测定 | 第18页 |
| ·酯酶同工酶分析 | 第18-19页 |
| ·酯酶提取液的制备 | 第18页 |
| ·制胶及电泳 | 第18页 |
| ·染色 | 第18-19页 |
| ·过氧化物同工酶分析 | 第19页 |
| ·过氧化物酶提取液的制备 | 第19页 |
| ·制胶及电泳 | 第19页 |
| ·染色 | 第19页 |
| ·RAPD分析 | 第19-21页 |
| ·基因组 DNA的提取 | 第19-20页 |
| ·基因池的建立 | 第20页 |
| ·RAPD技术体系 | 第20-21页 |
| ·PCR扩增体系的优化 | 第21页 |
| ·RAPD指纹图谱分析 | 第21页 |
| ·RAPD特异片段SCAR标记的转化 | 第21-24页 |
| ·目的基因克隆 | 第21-22页 |
| ·重组质粒DNA的鉴定 | 第22-23页 |
| ·序列分析及特异引物的设计、合成与PCR扩增 | 第23-24页 |
| 2 结果与分析 | 第24-39页 |
| ·形态观察 | 第24页 |
| ·各项生理指标和酶活性的测定 | 第24-27页 |
| ·含水量分析 | 第24-25页 |
| ·叶绿素含量分析 | 第25页 |
| ·糖含量分析 | 第25-26页 |
| ·过氧化物酶活性分析 | 第26-27页 |
| ·同工酶分析 | 第27-28页 |
| ·酯酶同工酶 | 第27页 |
| ·过氧化物同工酶 | 第27-28页 |
| ·满天星RAPD反应体系优化 | 第28-33页 |
| ·满天星试管玻璃化苗和正常苗基因组DNA琼脂糖凝胶电泳分析 | 第28页 |
| ·模板DNA含量对RAPD扩增的影响 | 第28-29页 |
| ·引物浓度对RAPD扩增的影响 | 第29-30页 |
| ·dNTP浓度对RAPD扩增的影响 | 第30页 |
| ·Mg~(2+)浓度对RAPD扩增的影响 | 第30-31页 |
| ·Taq DNA聚合酶用量对RAPD扩增的影响 | 第31-32页 |
| ·退火温度对PCR扩增体系的影响 | 第32-33页 |
| ·RAPD指纹图谱分析 | 第33-35页 |
| ·引物筛选 | 第33-34页 |
| ·群体各单株的RAPD分析 | 第34-35页 |
| ·RAPD特异片段SCAR标记的转化 | 第35-39页 |
| ·RAPD标记OPG17-1500的克隆、鉴定及测序分析 | 第35-37页 |
| ·RAPD标记转为SCAR标记及验证 | 第37-39页 |
| 3 讨论 | 第39-44页 |
| ·BA浓度对满天星玻璃化的影响 | 第39页 |
| ·满天星玻璃化苗生理生化指标 | 第39-41页 |
| ·满天星试管苗基因组DNA的提取与反应体系的优化 | 第41页 |
| ·满天星玻璃化苗的RAPD分析 | 第41-42页 |
| ·满天星玻璃化苗SCAR标记的转化 | 第42-44页 |
| 4 结论 | 第44-45页 |
| ·形态分析 | 第44页 |
| ·生理生化指标 | 第44页 |
| ·RAPD分析 | 第44页 |
| ·SCAR标记 | 第44-45页 |
| 参考文献 | 第45-52页 |
| 致谢 | 第52-53页 |
| 附录 | 第53页 |