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烟草MARs序列的克隆、功能研究及其在杨树中的应用

英文缩略表第1-7页
中文摘要第7-8页
1. 引言第8-18页
 1.1 MARs序列的分离鉴定第8-9页
 1.2 MARs序列的结构特征第9-11页
 1.3 MARs序列结合蛋白第11页
 1.4 MARs序列的作用机制第11-13页
 1.5 MARs序列功能研究现状第13-15页
 1.6 林木抗病虫基因工程研究进展第15-17页
  1.6.1 抗除草剂基因工程第15页
  1.6.2 抗病基因工程第15-16页
  1.6.3 抗虫基因工程第16-17页
 1.7 本课题选题依据第17-18页
2. 材料与方法第18-28页
 2.1 试验材料第18页
  2.1.1 植物材料第18页
  2.1.2 菌株与质粒第18页
  2.1.3 酶与生化试剂第18页
  2.1.4 PCR引物第18页
 2.2 试验方法第18-28页
  2.2.1 植物基因组DNA的提取(CTAB法)第18-19页
  2.2.2 烟草MARs序列的分离第19-22页
   2.2.2.1 烟草MARs序列的扩增第19-20页
   2.2.2.2 大肠杆菌感受态细胞的制备第20页
   2.2.2.3 连接及转化第20页
   2.2.2.4 碱法小量提取质粒DNA及酶切鉴定第20-21页
   2.2.2.5 序列测定第21-22页
  2.2.3 含有烟草MARs序列植物表达载体的构建第22-23页
   2.2.3.1 碱法大量提取质粒DNA第22-23页
   2.2.3.2 载体构建第23页
  2.2.4 根癌农杆菌LBA4404感受态细胞的制备及转化第23页
   2.2.4.1 农杆菌感受态细胞的制备第23页
   2.2.4.2 冻融法转化农杆菌第23页
  2.2.5 利用农杆菌介导转化烟草第23-25页
   2.2.5.1 农杆菌培养第23-24页
   2.2.5.2 烟草转化、培养和植株再生第24页
   2.2.5.3 转基因烟草植株的PCR检测第24-25页
  2.2.6 GUS基因在转基因烟草中的瞬时表达与稳定表达第25-27页
   2.2.6.1 组织化学染色法分析GUS基因在转基因烟草中的瞬时表达第25页
   2.2.6.2 荧光分析法定量测定GUS基因在转基因烟草中的稳定表达活性第25-27页
  2.2.7 烟草MARs序列的应用第27-28页
   2.2.7.1 大豆几丁质酶基因的分离第27页
   2.2.7.2 构建植物表达载体并转化农杆菌第27页
   2.2.7.3 利用农杆菌介导转化杨树第27-28页
3. 结果与分析第28-40页
 3.1 烟草MARs序列的分离及序列特征第28-30页
 3.2 含有烟草MARs序列植物表达载体的构建第30-32页
  3.2.1 载体构建图谱第30-32页
  3.2.2 PCR方法鉴定表达载体中MARs序列的插入方向第32页
 3.3 转基因烟草植株的获得及PCR检测第32-34页
  3.3.1 转基因烟草植株的获得第32-33页
  3.3.2 转基因烟草植株的PCR检测第33-34页
 3.4 烟草MARs序列的功能分析第34-37页
  3.4.1 GUS基因在转基因烟草中的瞬时表达第34页
  3.4.2 GUS基因在转基因烟草中的稳定表达第34-37页
   3.4.2.1 转基因烟草中GUS基因平均表达活性分析第34页
   3.4.2.2 转基因烟草植株之间GUS基因表达活性差异分析第34-37页
 3.5 烟草MARs序列的应用第37-40页
  3.5.1 大豆几丁质酶基因的克隆第37-38页
  3.5.2 植物表达载体的构建第38-39页
  3.5.3 转基因杨树抗性芽的获得第39-40页
4. 讨论第40-43页
 4.1 MARs序列的分离及序列特征第40页
 4.2 MARs序列作用机制及影响MARs序列功能的几个因素第40-42页
 4.3 杨树遗传转化过程中容易出现的几个问题第42页
 4.4 本课题今后研究工作设想第42-43页
5. 结论第43-44页
参考文献第44-52页
英文摘要第52-54页
致谢第54页

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