摘要 | 第5-6页 |
ABSTRACT | 第6页 |
1 前言 | 第9-14页 |
1.1 研究背景 | 第9-11页 |
1.1.1 米糠 | 第9页 |
1.1.2 γ-氨基丁酸 | 第9-10页 |
1.1.3 阿尔茨海默病 | 第10-11页 |
1.2 研究目的与意义 | 第11页 |
1.3 研究内容与技术路线 | 第11-14页 |
1.3.1 研究内容 | 第11-12页 |
1.3.2 技术路线 | 第12-14页 |
2 材料与方法 | 第14-27页 |
2.1 实验材料与仪器设备 | 第14-18页 |
2.1.1 实验材料 | 第14页 |
2.1.2 实验试剂 | 第14-15页 |
2.1.3 仪器设备 | 第15-16页 |
2.1.4 试剂配制 | 第16-18页 |
2.2 实验方法 | 第18-26页 |
2.2.1 米糠提取物的制备 | 第18页 |
2.2.2 米糠提取物储备液的配制 | 第18页 |
2.2.3 PC12细胞的培养 | 第18-19页 |
2.2.4 乳鼠海马神经细胞的原代培养 | 第19页 |
2.2.5 CCK-8法检测不同浓度RBE处理对PC12细胞活性的影响 | 第19-20页 |
2.2.6 CCK-8法检测RBE预孵育对Aβ_(25-35)致PC12细胞损伤的影响 | 第20页 |
2.2.7 CCK-8法检测RBE共孵育对Aβ_(25-35)致PC12细胞损伤的影响 | 第20页 |
2.2.8 CCK-8法检测RBE孵育对Aβ_(25-35)致PC12细胞损伤的影响 | 第20-21页 |
2.2.9 MTT法检测RBE预孵育对Aβ_(25-35)致海马神经细胞损伤的影响 | 第21页 |
2.2.10 RBE预孵育对Aβ_(25-35)致海马神经细胞LDH释放的影响 | 第21-22页 |
2.2.11 Hoechst 33342染色法检测海马神经细胞凋亡 | 第22页 |
2.2.12 荧光分光光度计法检测海马神经细胞内活性氧含量 | 第22-23页 |
2.2.13 荧光分光光度计法检测海马神经细胞线粒体膜电位 | 第23-24页 |
2.2.14 Western Blot检测海马神经细胞相关蛋白的表达 | 第24-26页 |
2.3 统计学分析 | 第26-27页 |
3 结果与讨论 | 第27-42页 |
3.1 结果 | 第27-37页 |
3.1.1 米糠提取物中γ-氨基丁酸含量 | 第27页 |
3.1.2 PC12细胞形态学观察 | 第27页 |
3.1.3 不同浓度RBE处理对PC12细胞活性的影响 | 第27-28页 |
3.1.4 RBE预孵育对Aβ_(25-35)致PC12细胞损伤的影响 | 第28-29页 |
3.1.5 RBE共孵育对Aβ_(25-35)致PC12细胞损伤的影响 | 第29-30页 |
3.1.6 RBE孵育对Aβ_(25-35)致PC12细胞损伤的影响 | 第30页 |
3.1.7 原代培养海马神经细胞形态学观察 | 第30-31页 |
3.1.8 RBE预孵育对Aβ_(25-35)致海马神经细胞损伤的影响 | 第31页 |
3.1.9 RBE预孵育对Aβ_(25-35)致海马神经细胞LDH释放的影响 | 第31-32页 |
3.1.10 RBE预孵育对Aβ_(25-35)诱导海马神经细胞调亡的影响 | 第32-34页 |
3.1.11 RBE预孵育对海马神经细胞内ROS含量的影响 | 第34页 |
3.1.12 RBE预孵育对海马神经细胞线粒体膜电位的影响 | 第34-35页 |
3.1.13 RBE预孵育对海马神经细胞相关蛋白表达的影响 | 第35-37页 |
3.2 讨论 | 第37-42页 |
4 结论 | 第42-44页 |
4.1 全文总结 | 第42页 |
4.2 论文的创新点 | 第42-43页 |
4.3 论文的不足之处 | 第43-44页 |
5 展望 | 第44-45页 |
6 参考文献 | 第45-50页 |
7 攻读硕士学位期间论文发表情况 | 第50-51页 |
8 致谢 | 第51页 |