| 摘要 | 第5-8页 |
| ABSTRACT | 第8-12页 |
| 第1章 绪论 | 第17-30页 |
| 1.1 多肽合成的分类 | 第18-19页 |
| 1.1.1 化学法 | 第18-19页 |
| 1.1.2 生物法 | 第19页 |
| 1.2 多肽纳米胶束的特点 | 第19-20页 |
| 1.3 载药胶束的制备方法 | 第20-21页 |
| 1.3.1 化学结合法 | 第20页 |
| 1.3.2 物理包埋法 | 第20-21页 |
| 1.4 影响多肽自组装的因素 | 第21-24页 |
| 1.4.1 氨基酸种类 | 第21-22页 |
| 1.4.2 氨基酸数目和排列顺序 | 第22页 |
| 1.4.3 pH | 第22页 |
| 1.4.4 离子强度 | 第22-23页 |
| 1.4.5 温度 | 第23-24页 |
| 1.5 多肽作为药物载体的应用 | 第24-27页 |
| 1.5.1 药物缓释 | 第24页 |
| 1.5.2 解决多重耐药性问题 | 第24页 |
| 1.5.3 主动靶向给药 | 第24-25页 |
| 1.5.4 透膜性 | 第25-27页 |
| 1.5.5 质子海绵效应 | 第27页 |
| 1.6 立题依据 | 第27-30页 |
| 1.6.1 本论文的研究目的和意义 | 第27-28页 |
| 1.6.2 本论文的主要研究内容 | 第28-30页 |
| 第2章 P10靶向肽的制备及其表征 | 第30-44页 |
| 2.1 引言 | 第30-31页 |
| 2.2 实验试剂及设备 | 第31-32页 |
| 2.2.1 实验试剂 | 第31页 |
| 2.2.2 实验设备及仪器 | 第31-32页 |
| 2.3 实验步骤 | 第32-34页 |
| 2.3.1 P10肽的制备 | 第32-33页 |
| 2.3.2 P10肽制备条件的优化 | 第33页 |
| 2.3.3 P10肽纯化 | 第33页 |
| 2.3.4 P10肽的质谱分析 | 第33-34页 |
| 2.3.5 P10肽的临界胶束浓度测定 | 第34页 |
| 2.3.6 荧光光谱分析 | 第34页 |
| 2.4 分析方法 | 第34页 |
| 2.5 结果与讨论 | 第34-42页 |
| 2.5.1 天冬氨酸脱保护的标准曲线 | 第34-35页 |
| 2.5.2 P10肽的优化分析 | 第35-38页 |
| 2.5.3 P10肽的HPLC纯化、质谱分析 | 第38页 |
| 2.5.4 P10肽临界胶束浓度的测定 | 第38-39页 |
| 2.5.5 荧光光谱分析 | 第39-42页 |
| 2.6 本章小结 | 第42-44页 |
| 第3章 P10-DOX靶向药物制备及其形态分析 | 第44-50页 |
| 3.1 引言 | 第44页 |
| 3.2 实验试剂及设备 | 第44页 |
| 3.2.1 实验试剂 | 第44页 |
| 3.2.2 实验设备及仪器 | 第44页 |
| 3.3 实验步骤 | 第44-46页 |
| 3.3.1 P10-DOX纳米微球的制备 | 第44-45页 |
| 3.3.2 P10-DOX纳米微球的傅立叶变换红外光谱分析 | 第45页 |
| 3.3.3 DOX标准曲线的建立 | 第45页 |
| 3.3.4 P10-DOX纳米微球包封率(EE)和载药率(DLE)测定 | 第45页 |
| 3.3.5 P10-DOX纳米微球的形态表征 | 第45-46页 |
| 3.4 分析方法 | 第46页 |
| 3.5 结果与讨论 | 第46-49页 |
| 3.5.1 P10-DOX纳米微球的红外光谱分析 | 第46-47页 |
| 3.5.2 DOX的标准曲线 | 第47-48页 |
| 3.5.3 P10-DOX纳米微球包封率(EE)和载药(DLE)率的计算 | 第48页 |
| 3.5.4 P10-DOX纳米微球的形态分析 | 第48-49页 |
| 3.6 本章小结 | 第49-50页 |
| 第4章 P10-DOX的药物缓释及其抗肿瘤活性分析 | 第50-56页 |
| 4.1 引言 | 第50页 |
| 4.2 实验试剂及设备 | 第50页 |
| 4.2.1 实验试剂 | 第50页 |
| 4.2.2 实验设备及仪器 | 第50页 |
| 4.3 实验步骤 | 第50-52页 |
| 4.3.1 P10-DOX纳米微球体外释放曲线的测定 | 第50-51页 |
| 4.3.2 P10-DOX纳米微球体外释药数学模型分析 | 第51页 |
| 4.3.3 P10的4T1细胞毒性实验 | 第51页 |
| 4.3.4 P10-DOX纳米微球的Hela细胞毒性实验 | 第51-52页 |
| 4.3.5 P10-DOX纳米微球细胞摄取实验 | 第52页 |
| 4.4 分析方法 | 第52页 |
| 4.5 结果与讨论 | 第52-55页 |
| 4.5.1 P10-DOX纳米微球的体外释药分析 | 第52-53页 |
| 4.5.2 P10-DOX纳米微球的体外释药数学模型分析 | 第53页 |
| 4.5.3 P10肽的细胞毒性 | 第53-54页 |
| 4.5.4 P10-DOX纳米微球的细胞毒性 | 第54-55页 |
| 4.5.5 P10-DOX的细胞摄取实验 | 第55页 |
| 4.6 本章小结 | 第55-56页 |
| 第5章 两亲性P10肽的修饰及其质子海绵效应 | 第56-68页 |
| 5.1 引言 | 第56-57页 |
| 5.2 实验试剂及设备 | 第57页 |
| 5.2.1 实验试剂 | 第57页 |
| 5.2.2 实验设备及仪器 | 第57页 |
| 5.3 方法 | 第57-60页 |
| 5.3.1 P13肽的合成 | 第57页 |
| 5.3.2 P13肽纯化 | 第57-58页 |
| 5.3.3 P13肽的质谱分析 | 第58页 |
| 5.3.4 酸碱滴定实验 | 第58页 |
| 5.3.5 P13肽的临界胶束浓度测定 | 第58-59页 |
| 5.3.6 P13-DOX纳米微球的制备 | 第59页 |
| 5.3.7 P13-DOX纳米微球的形态分析 | 第59页 |
| 5.3.8 P13-DOX纳米微球包封率(EE)和载药率(DLE)测定 | 第59页 |
| 5.3.9 P13-DOX纳米微球的傅立叶变换红外光谱 | 第59页 |
| 5.3.10 体外释药实验 | 第59-60页 |
| 5.3.11 P13-DOX纳米微球细胞毒性实验 | 第60页 |
| 5.3.12 P13-DOX纳米微球细胞摄取实验 | 第60页 |
| 5.4 分析方法 | 第60页 |
| 5.5 结果 | 第60-67页 |
| 5.5.1 P13肽的HPLC纯化、质谱分析 | 第60-61页 |
| 5.5.2 酸碱滴定结果分析 | 第61-62页 |
| 5.5.3 P13肽临界胶束浓度的测定 | 第62页 |
| 5.5.4 P13-DOX纳米微球的红外光谱分析 | 第62-63页 |
| 5.5.5 P13-DOX纳米微球的形态结构分析 | 第63-64页 |
| 5.5.6 P13-DOX纳米微球的包封率(EE)和载药率(DLE)的计算 | 第64页 |
| 5.5.7 P13-DOX纳米微球的体外释药特性分析 | 第64-65页 |
| 5.5.8 细胞毒性和细胞内定位实验 | 第65-67页 |
| 5.6 本章小结 | 第67-68页 |
| 第6章 结论与展望 | 第68-70页 |
| 6.1 结论 | 第68-69页 |
| 6.2 本文的创新点 | 第69页 |
| 6.3 展望 | 第69-70页 |
| 参考文献 | 第70-83页 |
| 攻读学位期间发表的学术论文目录 | 第83-84页 |
| 致谢 | 第84页 |
