| 摘要 | 第4-7页 |
| Abstract | 第7-9页 |
| 引言 | 第13-15页 |
| 第一章 绪论 | 第15-24页 |
| 1 蟹类病毒研究概况 | 第15-18页 |
| 1.1 呼肠孤病毒科(Reoviridae) | 第15-16页 |
| 1.2 双顺反子病毒科(Dicistroviridae) | 第16页 |
| 1.3 疱疹病毒科(Herpesviridae) | 第16-17页 |
| 1.4 杆状病毒科(Baculoviridae) | 第17页 |
| 1.5 线头病毒科(Nimaviridae) | 第17-18页 |
| 2 甲壳动物的免疫系统 | 第18-19页 |
| 2.1 器官免疫 | 第18页 |
| 2.2 细胞免疫 | 第18-19页 |
| 2.3 体液免疫 | 第19页 |
| 3 中草药的抗病毒作用 | 第19-20页 |
| 3.1 抗病毒中草药简介 | 第19-20页 |
| 3.2 中草药抗病毒的作用机理 | 第20页 |
| 4 预实验 | 第20-24页 |
| 4.1 氨氮急性毒性预实验 | 第21页 |
| 4.1.1 预实验材料 | 第21页 |
| 4.1.2 预实验方法 | 第21页 |
| 4.2 结果与分析 | 第21-22页 |
| 4.3 讨论 | 第22-23页 |
| 4.4 结论 | 第23-24页 |
| 第二章 GLWE对青蟹血清中免疫相关酶活力的影响 | 第24-34页 |
| 1 材料与方法 | 第24-26页 |
| 1.1 实验材料 | 第24-25页 |
| 1.1.1 实验动物 | 第24页 |
| 1.1.2 实验中药 | 第24页 |
| 1.1.3 实验试剂及仪器 | 第24-25页 |
| 1.2 实验方法 | 第25-26页 |
| 1.2.1 实验分组 | 第25页 |
| 1.2.2 病毒检测 | 第25-26页 |
| 1.2.3 血清制备 | 第26页 |
| 1.2.4 免疫相关酶活力测定 | 第26页 |
| 1.2.5 实验数据处理 | 第26页 |
| 2 结果与分析 | 第26-31页 |
| 2.1 MCRV巢式PCR检测 | 第26-27页 |
| 2.2 成活率 | 第27-28页 |
| 2.3 GLWE对免疫相关酶活力的影响 | 第28-31页 |
| 2.3.1 ACP、AKP和LZM | 第28页 |
| 2.3.2 SOD和CAT | 第28页 |
| 2.3.3 PO | 第28-29页 |
| 2.3.4 TNOS和iNOS | 第29-31页 |
| 3 讨论 | 第31-34页 |
| 3.1 GLWE对拟穴青蟹成活率的影响 | 第31页 |
| 3.2 GLWE对免疫相关酶活力的影响 | 第31-34页 |
| 3.2.1 ACP、AKP和LZM | 第31-32页 |
| 3.2.2 SOD和CAT | 第32页 |
| 3.2.3 PO | 第32-33页 |
| 3.2.4 TNOS和iNOS | 第33-34页 |
| 第三章 GLWE对青蟹呼肠孤病毒增殖的影响 | 第34-43页 |
| 1 材料与方法 | 第34-37页 |
| 1.1 实验材料 | 第34-35页 |
| 1.1.1 实验动物 | 第34页 |
| 1.1.2 实验中药 | 第34页 |
| 1.1.3 实验试剂及仪器 | 第34页 |
| 1.1.4 溶液及培养基配制 | 第34-35页 |
| 1.1.5 病毒粗提液 | 第35页 |
| 1.1.6 实验数据处理 | 第35页 |
| 1.2 实验方法 | 第35-37页 |
| 1.2.1 自然感染组 | 第35页 |
| 1.2.2 人工感染组 | 第35页 |
| 1.2.3 样品采集 | 第35-36页 |
| 1.2.4 荧光定量引物及探针 | 第36页 |
| 1.2.5 总RNA及cDNA的合成 | 第36页 |
| 1.2.6 MCRV标准品的制备 | 第36页 |
| 1.2.7 标准曲线的绘制 | 第36-37页 |
| 1.2.8 MCRV荧光定量PCR反应条件 | 第37页 |
| 2 结果与分析 | 第37-40页 |
| 2.1 MCRV实时荧光定量PCR标准曲线的绘制 | 第37-38页 |
| 2.2 GLWE对青蟹肝胰腺中MCRV增殖的影响(自然感染) | 第38-39页 |
| 2.3 GLWE对青蟹肝胰腺中MCRV增殖的影响(人工感染) | 第39-40页 |
| 2.4 成活率 | 第40页 |
| 3 讨论 | 第40-43页 |
| 第四章 GLWE处理下的拟穴青蟹肝胰腺转录组学分析 | 第43-57页 |
| 1 材料与方法 | 第43-45页 |
| 1.1 实验材料 | 第43页 |
| 1.1.1 实验动物 | 第43页 |
| 1.1.2 实验中药 | 第43页 |
| 1.1.3 实验试剂及仪器 | 第43页 |
| 1.2 实验方法 | 第43-44页 |
| 1.2.1 实验分组 | 第43页 |
| 1.2.2 样品采集 | 第43页 |
| 1.2.3 总RNA及cDNA的合成 | 第43页 |
| 1.2.4 筛选差异表达基因的定量验证 | 第43-44页 |
| 1.3 数据分析 | 第44-45页 |
| 2 结果与分析 | 第45-54页 |
| 2.1 DeNovo组装 | 第45-46页 |
| 2.2 Unigene序列功能注释 | 第46-47页 |
| 2.3 基于Gene Ontology、KEGG分析的功能分类 | 第47-49页 |
| 2.4 差异表达基因GO和Pathway富集分析 | 第49-53页 |
| 2.4.1 差异表达基因GO富集分析 | 第49-51页 |
| 2.4.2 差异表达基因Pathway富集分析 | 第51-52页 |
| 2.4.3 筛选差异表达基因的定量验证 | 第52-53页 |
| 2.5 SNP和SSR分析(分子标记鉴定) | 第53-54页 |
| 3 讨论 | 第54-57页 |
| 全文总结 | 第57-58页 |
| 参考文献 | 第58-65页 |
| 附录 | 第65-69页 |
| 缩略词 | 第69-70页 |
| 发表文章 | 第70-71页 |
| 致谢 | 第71页 |
