| 摘要 | 第7-9页 |
| ABSTRACT | 第9-10页 |
| 缩略词 | 第11-12页 |
| 第一章 文献综述 | 第12-24页 |
| 1 植物的生命周期及其碳水化合物积累动态研究 | 第12-14页 |
| 1.1 植物生命周期的概念 | 第12页 |
| 1.2 植物生长过程与碳水化合物积累的关系研究 | 第12-14页 |
| 2 植物休眠生理研究进展 | 第14-19页 |
| 2.1 休眠的概念 | 第14-15页 |
| 2.2 休眠的类型及阶段 | 第15页 |
| 2.3 植物休眠生理变化研究 | 第15-19页 |
| 3 植物休眠生理及相关基因的研究 | 第19-20页 |
| 4 百蕊草的研究概况 | 第20-22页 |
| 4.1 百蕊草植物学特征 | 第20-21页 |
| 4.2 百蕊草本草考证 | 第21页 |
| 4.3 百蕊草半寄生机制研究 | 第21页 |
| 4.4 百蕊草化学成分及药理作用研究 | 第21-22页 |
| 4.5 百蕊草组织培养 | 第22页 |
| 5 研究目的和意义 | 第22-24页 |
| 第二章 百蕊草生长过程及碳水化合物积累动态研究 | 第24-36页 |
| 1 实验材料及仪器 | 第25-26页 |
| 1.1 材料 | 第25页 |
| 1.2 主要试剂和仪器 | 第25-26页 |
| 2 实验方法 | 第26-28页 |
| 2.1 百蕊生长状态观察 | 第26页 |
| 2.2 碳水化合物测定 | 第26-27页 |
| 2.3 淀粉酶活力测定方法 | 第27页 |
| 2.4 组织淀粉粒显微观察 | 第27-28页 |
| 2.5 数据处理 | 第28页 |
| 3 结果与分析 | 第28-34页 |
| 3.1 百蕊草物候期 | 第28-29页 |
| 3.2 百蕊草生长过程淀粉含量变化特征 | 第29-32页 |
| 3.3 百蕊草生长过程可溶性糖含量变化特征 | 第32-33页 |
| 3.4 百蕊草生长过程淀粉酶活力变化特征 | 第33-34页 |
| 4 讨论 | 第34-36页 |
| 第三章 百蕊草越冬休眠生理研究 | 第36-62页 |
| 第一节 百蕊草越冬休眠中糖类物质及可溶性蛋白质变化 | 第38-46页 |
| 1 实验材料及仪器 | 第38页 |
| 1.1 材料 | 第38页 |
| 1.2 主要试剂和仪器 | 第38页 |
| 2 实验方法 | 第38-39页 |
| 3 结果与分析 | 第39-43页 |
| 3.1 百蕊草休眠过程中淀粉含量变化 | 第39-40页 |
| 3.2 百蕊草休眠过程中可溶性糖含量变化 | 第40页 |
| 3.3 百蕊草休眠过程中可溶性蛋白含量变化 | 第40-41页 |
| 3.4 芽、主根、侧根内糖类物质和可溶性蛋白的相关性分析 | 第41-43页 |
| 4 讨论 | 第43-46页 |
| 第二节 百蕊草越冬休眠MDA含量及抗氧化酶活性变化 | 第46-54页 |
| 1 实验材料及仪器 | 第46页 |
| 1.1 材料 | 第46页 |
| 1.2 主要试剂和仪器 | 第46页 |
| 2 实验方法 | 第46-47页 |
| 3 结果与分析 | 第47-51页 |
| 3.1 百蕊草越冬休眠过程中MDA含量变化 | 第47-48页 |
| 3.2 百蕊草越冬休眠过程中SOD活性变化 | 第48-49页 |
| 3.3 百蕊草越冬休眠过程中POD活性变化 | 第49-50页 |
| 3.4 芽、主根、侧根内MDA含量和SOD、POD活性的相关性分析 | 第50-51页 |
| 4 讨论 | 第51-54页 |
| 第三节 百蕊草越冬休眠过程中内源激素的变化 | 第54-62页 |
| 1 实验材料及仪器 | 第54页 |
| 1.1 材料 | 第54页 |
| 1.2 主要试剂和仪器 | 第54页 |
| 2 实验方法 | 第54页 |
| 3 结果与分析 | 第54-59页 |
| 3.1 百蕊草休眠过程中IAA含量变化 | 第54-55页 |
| 3.2 百蕊草休眠过程中ABA含量变化 | 第55-56页 |
| 3.3 百蕊草休眠过程中GA_3含量变化 | 第56-57页 |
| 3.4 百蕊草休眠过程中ZR含量变化 | 第57-58页 |
| 3.5 百蕊草休眠过程中内源激素比值变化 | 第58-59页 |
| 4 讨论 | 第59-62页 |
| 第四章 百蕊草越冬休眠相关基因的相对表达量分析 | 第62-72页 |
| 1 实验材料及仪器 | 第63-64页 |
| 1.1 材料 | 第63页 |
| 1.2 主要试剂和仪器 | 第63-64页 |
| 2 实验方法 | 第64-66页 |
| 2.1 引物设计 | 第64页 |
| 2.2 总RNA提取 | 第64-65页 |
| 2.3 cDNA的反转录合成 | 第65页 |
| 2.4 荧光定量PCR检测基因表达水平 | 第65-66页 |
| 3 结果与分析 | 第66-70页 |
| 3.1 总RNA的质量 | 第66-67页 |
| 3.2 荧光定量PCR溶解曲线检测结果 | 第67-68页 |
| 3.3 不同阶段百蕊草组织中TcPRO的表达差异 | 第68页 |
| 3.4 不同阶段百蕊草组织中TcCHL的表达差异 | 第68-69页 |
| 3.5 不同阶段百蕊草组织中TcMAN的表达差异 | 第69-70页 |
| 4 讨论 | 第70-72页 |
| 全文结论 | 第72页 |
| 创新点 | 第72-74页 |
| 附录 | 第74-76页 |
| 附图 | 第76-78页 |
| 参考文献 | 第78-88页 |
| 发表论文 | 第88-90页 |
| 致谢 | 第90页 |
