| 中文摘要 | 第3-5页 |
| abstract | 第5-7页 |
| 缩略语对照表 | 第8-12页 |
| 引言 | 第12-16页 |
| 实验内容 | 第16-60页 |
| 1.实验一 视网膜小胶质细胞在感光细胞凋亡模型中的活化、迁移 | 第16-25页 |
| 1.1 实验材料 | 第16-17页 |
| 1.1.1 实验动物 | 第16页 |
| 1.1.2 实验药品及试剂 | 第16页 |
| 1.1.3 主要实验仪器 | 第16-17页 |
| 1.1.4 试剂配制方法 | 第17页 |
| 1.2 实验方法 | 第17-19页 |
| 1.2.1 造模方法 | 第17页 |
| 1.2.2 分组方法 | 第17页 |
| 1.2.3 观察指标 | 第17-19页 |
| 1.3 统计方法 | 第19-20页 |
| 1.4 实验结果 | 第20-24页 |
| 1.4.1 视网膜组织形态学观察及ONL厚度 | 第20-22页 |
| 1.4.2 感光细胞凋亡检测结果 | 第22-23页 |
| 1.4.3 视网膜小胶质细胞活化、迁移情况 | 第23-24页 |
| 1.5 小结 | 第24-25页 |
| 2.实验二 针刺调控NF-κB通路抑制视网膜小胶质细胞活性效应及机制研究 | 第25-41页 |
| 2.1 实验材料 | 第25-27页 |
| 2.1.1 实验动物 | 第25页 |
| 2.1.2 实验药品及试剂 | 第25-26页 |
| 2.1.3 主要实验仪器 | 第26-27页 |
| 2.1.4 试剂配制方法 | 第27页 |
| 2.2 实验方法 | 第27-30页 |
| 2.2.1 造模方法 | 第27页 |
| 2.2.2 分组及治疗方法 | 第27-28页 |
| 2.2.3 观察指标 | 第28-30页 |
| 2.3 统计方法 | 第30-31页 |
| 2.4 实验结果 | 第31-40页 |
| 2.4.1 针刺对视网膜组织形态的影响 | 第31-32页 |
| 2.4.2 针刺对感光细胞凋亡的影响 | 第32-33页 |
| 2.4.3 针刺对视网膜小胶质细胞活化的影响 | 第33-35页 |
| 2.4.4 针刺对视网膜IL-1β、TNF-α含量影响 | 第35-36页 |
| 2.4.5 针刺对视网膜NF-κBp65、IκBα蛋白表达的影响 | 第36-40页 |
| 2.5 小结 | 第40-41页 |
| 3.讨论 | 第41-59页 |
| 3.1 感光细胞凋亡动物模型的选择 | 第41-44页 |
| 3.1.1 自发变性视网膜动物模型 | 第41-42页 |
| 3.1.2 转基因动物模型 | 第42页 |
| 3.1.3 光损伤模型 | 第42-43页 |
| 3.1.4 MNU诱导的感光细胞凋亡模型 | 第43-44页 |
| 3.2 现代医学对视网膜色素变性的治疗研究现状 | 第44-47页 |
| 3.2.1 药物治疗 | 第44-46页 |
| 3.2.2 基因治疗 | 第46-47页 |
| 3.2.3 移植治疗 | 第47页 |
| 3.3 传统医学对视网膜色素变性的认识 | 第47-48页 |
| 3.4 针刺穴位选择依据 | 第48-51页 |
| 3.5 阳性对照药物选择依据 | 第51-52页 |
| 3.6 针刺调控NF-κB信号通路抑制视网膜小胶质细胞活性效应及机制研究 | 第52-59页 |
| 3.6.1 减少感光细胞凋亡,保护视网膜结构 | 第52-53页 |
| 3.6.2 抑制视网膜小胶质细胞活化阻断感光细胞凋亡 | 第53-55页 |
| 3.6.3 减少IL-1β和TNF-α含量产生 | 第55-56页 |
| 3.6.4 调控NF-κB信号通路抑制小胶质细胞活化 | 第56-59页 |
| 4.结论 | 第59-60页 |
| 问题与展望 | 第60-61页 |
| 致谢 | 第61-62页 |
| 参考文献 | 第62-72页 |
| 综述 | 第72-84页 |
| 参考文献 | 第79-84页 |
| 附录一 ：在读期间公开发表的学术论文、专著及科研成果 | 第84-85页 |
