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生长发育过程中特定ADME基因表达变化对伊马替尼及SU-1113处置影响的研究

摘要第4-7页
ABSTRACT第7-9页
引言第16-23页
    参考文献第19-23页
第一部分 生长发育过程中Mdr1基因表达与神经毒性研究第23-87页
    第一章 伊马替尼在不同日龄大鼠体内药动学研究第23-58页
        1.1 前言第23页
        1.2 材料与方法第23-29页
            1.2.1 药品与试剂第23-24页
            1.2.2 仪器、色谱及质谱条件第24-27页
            1.2.3 溶液配制第27页
            1.2.4 样品预处理第27页
            1.2.5 伊马替尼及N-去甲基伊马替尼方法学验证第27-28页
            1.2.6 动物实验方案和样品采集第28-29页
            1.2.7 数据统计第29页
        1.3 结果第29-55页
            1.3.1 伊马替尼及N-去甲基伊马替尼在大鼠血浆中LC-MS/MS分析方法验证第29-40页
            1.3.2 静脉注射给药伊马替尼在不同日龄大鼠体内药动学研究第40-43页
            1.3.3 口服灌胃给药,伊马替尼及N-去甲基伊马替尼在不同日龄大鼠体内药动学研究第43-48页
            1.3.4 伊马替尼及N-去甲基伊马替尼在不同日龄大鼠脑组织分布第48-55页
        1.4 总结与讨论第55-56页
        参考文献第56-58页
    第二章 不同日龄大鼠脑组织中Mdr1基因表达变化第58-73页
        2.1 前言第58-59页
        2.2 材料与方法第59-66页
            2.2.1 药品与试剂第59-60页
            2.2.2 仪器第60页
            2.2.3 标准曲线配制及样品预处理第60-61页
            2.2.4 伊马替尼及N-去甲基伊马替尼在体外MDCKII-MDR1稳转细胞中跨膜转运实验第61页
            2.2.5 组织RNA及蛋白提取第61-62页
            2.2.6 mRNA定量第62-64页
            2.2.7 WesternBloting第64-66页
            2.2.8 数据统计第66页
        2.3 结果第66-70页
            2.3.1 伊马替尼及N-去甲基伊马替尼在体外MDCKII-MDR1稳转细胞中跨膜转运实验第66-69页
            2.3.2 不同日龄大鼠脑组织中Mdr1基因表达第69-70页
        2.4 总结与讨论第70-71页
        参考文献第71-73页
    第三章 伊马替尼对不同日龄大鼠骨骼毒性的研究第73-87页
        3.1 前言第73-74页
        3.2 材料与方法第74-78页
            3.2.1 药品与试剂第74页
            3.2.2 仪器第74-75页
            3.2.3 大鼠原代成骨细胞的分离及培养第75页
            3.2.4 原代成骨细胞对伊马替尼摄取实验第75-76页
            3.2.5 CCK-8法检测细胞活力第76页
            3.2.6 耐受性动物实验方案及样品采集第76-77页
            3.2.7 大鼠血清中骨钙蛋白检测第77页
            3.2.8 大鼠血清中骨碱性磷酸酶检测第77-78页
            3.2.9 数据计算第78页
        3.3 结果第78-84页
            3.3.1 不同日龄大鼠原代成骨细胞的分离第78-79页
            3.3.2 不同日龄大鼠成骨细胞对伊马替尼的摄取第79-80页
            3.3.3 伊马替尼对不同日龄大鼠成骨细胞生存率的影响第80-81页
            3.3.4 长期灌胃给予伊马替尼大鼠耐受性及骨骼毒性评价第81-83页
            3.3.5 伊马替尼脑分布与血清骨钙蛋白、骨碱性磷酸酶水平相关性评估第83-84页
        3.4 总结与讨论第84页
        参考文献第84-87页
第二部分 基于CYP相互作用的药动学增强剂——新型抗HIV病毒药物SU-1113成药性研究··第87-128页
    第一章 SU-1113在体外孵育体系中代谢产物鉴定第87-97页
        1.1 前言第87-88页
        1.2 材料与方法第88-90页
            1.2.1 药品与试剂第88页
            1.2.2 仪器、色谱及质谱条件第88-89页
            1.2.3 体外肝微粒体及肝细胞中孵育实验第89页
            1.2.4 甲氧胺体外捕获醛基中间体实验第89-90页
            1.2.5 样品预处理第90页
        1.3 结果第90-95页
            1.3.1 SU-1113及主要代谢产物质谱裂解规律第90-91页
            1.3.2 体外肝微粒体及肝细胞中代谢产物鉴定第91-94页
            1.3.3 醛基中间体捕获研究第94-95页
        1.4 总结与讨论第95-96页
        参考文献第96-97页
    第二章 SU-1113代谢酶表型鉴定及酶抑制研究第97-103页
        2.1 前言第97页
        2.2 材料与方法第97-99页
            2.2.1 药品与试剂第97页
            2.2.2 仪器、色谱及质谱条件第97页
            2.2.3 SU-1113在重组CYP450酶中的代谢第97-98页
            2.2.4 SU-1113在重组UGT酶中的代谢第98页
            2.2.5 SU-1113在人肝微粒体中对主要代谢酶抑制研究第98-99页
            2.2.6 数据计算第99页
        2.3 结果第99-101页
            2.3.1 SU-1113在重组CYP450酶中的代谢第99-100页
            2.3.2 SU-1113在重组UGT酶中的代谢第100页
            2.3.3 SU-1113在人肝微粒体中对主要代谢酶抑制研究第100-101页
        2.4 总结与讨论第101-102页
        参考文献第102-103页
    第三章 SU-1113在体外细胞体系转运实验研究第103-112页
        3.1 前言第103页
        3.2 材料与方法第103-109页
            3.2.1 药品与试剂第103-104页
            3.2.2 仪器、色谱及质谱条件第104-106页
            3.2.3 溶液配制第106页
            3.2.4 标准曲线配制及生物样品处理第106-107页
            3.2.5 SU-1113在Caco-2单层细胞模型跨膜转运实验第107页
            3.2.6 SU-1113在MDCKII-MDR1单层细胞模型跨膜转运实验第107-108页
            3.2.7 SU-1113对P-gp转运功能抑制研究第108页
            3.2.8 数据统计第108-109页
        3.3 结果第109-111页
            3.3.1 SU-1113在Caco-2单层细胞模型跨膜转运实验第109页
            3.3.2 SU-1113在MDCKII-MDR1单层细胞模型跨膜转运实验第109-110页
            3.3.3 SU-1113对P-gp转运功能抑制研究第110-111页
        3.4 总结与讨论第111页
        参考文献第111-112页
    第四章 SU-1113在幼年大鼠体内药动学研究第112-117页
        4.1 前言第112页
        4.2 材料与方法第112-114页
            4.2.1 药品与试剂第112页
            4.2.2 仪器、色谱及质谱条件第112-113页
            4.2.3 动物实验方案及样品采集第113页
            4.2.4 标准曲线配置及生物样品处理第113页
            4.2.5 数据统计第113-114页
        4.3 结果第114-116页
            4.3.1 SU-1113在不同日龄大鼠体内药动学研究第114-116页
        4.4 总结与讨论第116页
        参考文献第116-117页
    第五章 SU-1113与抗HIV病毒药物联用药动学研究第117-128页
        5.1 前言第117页
        5.2 材料与方法第117-121页
            5.2.1 药品与试剂第117页
            5.2.2 仪器、色谱及质谱条件第117-120页
            5.2.3 SU-1113与阿扎那韦、利托那韦联用动物实验方案及样品采集第120页
            5.2.4 标准曲线配置及生物样品处理第120-121页
            5.2.5 数据统计第121页
        5.3 结果第121-126页
            5.3.1 SU-1113与阿扎那韦联用在大鼠体内药动学研究第121-123页
            5.3.2 SU-1113与利托那韦联用在大鼠体内药动学研究第123-126页
        5.4 总结与讨论第126页
        参考文献第126-128页
第三部分 全文总结与展望第128-131页
    生长发育过程中MDR1基因表达变化与伊马替尼脑分布及骨骼毒性第128-129页
    抗病毒药物SU-1113成药性研究第129-131页
综述第131-144页
    参考文献第139-144页
缩略词说明第144-148页
攻读学位期间发表论文第148-150页
致谢第150-152页

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