| 摘要 | 第5-7页 |
| abstract | 第7-8页 |
| 第1章 绪论 | 第12-16页 |
| 1.1 低共熔溶剂的研究进展 | 第12页 |
| 1.2 分离基质的研究进展 | 第12-14页 |
| 1.2.1 聚醚微球 | 第12-13页 |
| 1.2.2 分子印迹聚合物 | 第13页 |
| 1.2.3 二维材料 | 第13-14页 |
| 1.3 新型分离材料的开发与应用 | 第14页 |
| 1.4 药物活性分子的分离 | 第14-15页 |
| 1.5 选题意义与方向 | 第15-16页 |
| 第2章 氯化胆碱类低共熔溶剂分离纯化棕榈多酚 | 第16-31页 |
| 2.1 前言 | 第16页 |
| 2.2 实验部分 | 第16-21页 |
| 2.2.1 试剂与仪器 | 第16-18页 |
| 2.2.2 棕榈样品的萃取 | 第18-20页 |
| 2.2.3 棕榈多酚的分离 | 第20页 |
| 2.2.4 ChClDESs-SPE与商业SPE比较 | 第20-21页 |
| 2.3 结果与讨论 | 第21-29页 |
| 2.3.1 ChClDESs种类对萃取棕榈多酚的影响 | 第21-22页 |
| 2.3.2 ChCl-DESs修饰的聚醚微球的结构表征 | 第22-24页 |
| 2.3.3 ChClDESs种类对聚醚微球吸附的影响 | 第24-26页 |
| 2.3.4 ChClDESs-SPE分离纯化棕榈多酚的影响 | 第26-28页 |
| 2.3.5 重复性评估 | 第28-29页 |
| 2.3.6 ChCl-Ph(1:1)修饰的聚醚微球与C_(18)和C_8比较 | 第29页 |
| 2.4 本章小结 | 第29-31页 |
| 第3章 氯化胆碱三元低共熔溶剂印迹聚合物分离祁紫菀多酚 | 第31-44页 |
| 3.1 前言 | 第31页 |
| 3.2 实验部分 | 第31-33页 |
| 3.2.1 试剂与仪器 | 第31-32页 |
| 3.2.2 HPLC分析 | 第32页 |
| 3.2.3 ChClDES-MIPs的制备 | 第32-33页 |
| 3.2.4 祁紫菀多酚的萃取 | 第33页 |
| 3.2.5 ChClDES-MIPs吸附条件的优化 | 第33页 |
| 3.2.6 与非分子印迹聚合物(NIP)、C_(18)和C_8吸附剂比较 | 第33页 |
| 3.3 结果与讨论 | 第33-43页 |
| 3.3.1 ChClDES-MIPs的合成机理 | 第33-35页 |
| 3.3.2 ChClDES-MIPs的结构表征 | 第35-36页 |
| 3.3.3 ChClDES-MIPs吸附性能的考察 | 第36-41页 |
| 3.3.4 ChClDES-MIPs与NIP、C_(18)和C_8的比较 | 第41-42页 |
| 3.3.5 ChClDES-MIPs的应用 | 第42-43页 |
| 3.4 结论 | 第43-44页 |
| 第4章 磁性纳米生物DES-MIP@Fe_3O_4@MoS_2分离牛奶中β-乳球蛋白 | 第44-58页 |
| 4.1 前言 | 第44页 |
| 4.2 实验部分 | 第44-48页 |
| 4.2.1 试剂与仪器 | 第44-45页 |
| 4.2.2 HPLC分析 | 第45页 |
| 4.2.3 DES-MIP@Fe_3O_4@MoS_2的制备 | 第45-46页 |
| 4.2.4 DES-MIP@Fe_3O_4@MoS_2的吸附过程 | 第46页 |
| 4.2.5 再生性考察 | 第46页 |
| 4.2.6 抗菌活性测定 | 第46-48页 |
| 4.3 结果与讨论 | 第48-57页 |
| 4.3.1 DES-MIP@Fe_3O_4@MoS_2的合成机理 | 第48-49页 |
| 4.3.2 DES-MIP@Fe_3O_4@MoS_2的结构表征 | 第49-51页 |
| 4.3.3 DES-MIP@Fe_3O_4@MoS_2吸附性能的考察 | 第51-53页 |
| 4.3.4 等温线与动力学分析 | 第53-54页 |
| 4.3.5 DES-MIP@Fe_3O_4@MoS_2的应用 | 第54-56页 |
| 4.3.6 再生性评估 | 第56页 |
| 4.3.7 抗菌活性评估 | 第56-57页 |
| 4.4 结论 | 第57-58页 |
| 第5章 结论与展望 | 第58-59页 |
| 5.1 结论 | 第58页 |
| 5.2 展望 | 第58-59页 |
| 参考文献 | 第59-65页 |
| 致谢 | 第65-66页 |
| 攻读学位期间取得的科研成果 | 第66页 |
