中文摘要 | 第7-10页 |
英文摘要 | 第10-13页 |
常用缩写词中英文对照表 | 第14-15页 |
前言 | 第15-19页 |
第一部分 白藜芦醇改善AD大鼠记忆功能与神经元结构 | 第19-32页 |
1 材料试剂与主要仪器设备 | 第19-20页 |
1.1 实验动物与饲养 | 第19页 |
1.2 主要实验试剂 | 第19页 |
1.3 溶液配制 | 第19-20页 |
1.4 主要仪器和设备 | 第20页 |
2 实验方法 | 第20-22页 |
2.1 卵巢摘除术 | 第20页 |
2.2 灌胃及腹腔注射 | 第20页 |
2.3 Morirs水迷宫 | 第20-21页 |
2.4 样品采集方法 | 第21页 |
2.5 透射电镜检测 | 第21页 |
2.6 统计学分析 | 第21-22页 |
3 结果 | 第22-29页 |
3.1 实验期间各组大鼠体重与食物利用率 | 第22-24页 |
3.2 白藜芦醇对AD大鼠空间记忆影响 | 第24-26页 |
3.3 透射电镜下观察海马神经元超微结构的结果 | 第26-29页 |
4 讨论 | 第29-31页 |
4.1 D-半乳糖联合去卵巢大鼠可作为AD研究较理想的动物模型 | 第29-30页 |
4.2 行为学实验结果表明Res可以显著AD大鼠记忆功能 | 第30页 |
4.3 Res可以改善海马神经元细胞超微结构 | 第30-31页 |
5 结论 | 第31-32页 |
第二部分 白藜芦醇对AD大鼠中Aβ1-42 转运、聚集与血脑屏障完整性的影响 | 第32-47页 |
1 材料试剂与主要仪器设备 | 第32-36页 |
1.1 实验动物与饲养 | 第32页 |
1.2 主要实验试剂 | 第32-33页 |
1.3 溶液配制 | 第33-35页 |
1.4 主要仪器和设备 | 第35-36页 |
2 实验方法 | 第36-38页 |
2.1 样品采集方法 | 第36页 |
2.2 蛋白的浓度检测 | 第36页 |
2.3 Western blot法检测海马组织 β-APP蛋白、RAGE蛋白、MMP-9 蛋白、Claudin-5蛋白总量 | 第36-37页 |
2.4 ELISA法检测血清与海马组织匀浆中Aβ1-42 浓度 | 第37页 |
2.5 IHC法检测海马组织中RAGE蛋白与C laudin-5 蛋白表达 | 第37-38页 |
2.6 数据分析 | 第38页 |
3 结果 | 第38-44页 |
3.1 各组大鼠血清与海马组织中 β-APP与Aβ1-42、RAGE含量 | 第38-41页 |
3.2 各组大鼠海马组织中MMP-9 蛋白与Claudin-5 蛋白含量 | 第41-44页 |
4 讨论 | 第44-46页 |
4.1 Res对AD大鼠海马组织中RAGE转运Aβ1-42 的作用 | 第44-46页 |
4.2 Res对AD大鼠BBB上蛋白的影响及其保护机制 | 第46页 |
5 结论 | 第46-47页 |
第三部分 白藜芦醇通过NF-κB炎性信号通路调节AD大鼠海马炎症 | 第47-53页 |
1 材料试剂与主要仪器设备 | 第47-48页 |
1.1 实验动物与饲养 | 第47页 |
1.2 主要实验试剂 | 第47页 |
1.3 溶液配制 | 第47页 |
1.4 主要仪器和设备 | 第47-48页 |
2 实验方法 | 第48-49页 |
2.1 样品采集方法 | 第48页 |
2.2 蛋白浓度检测 | 第48页 |
2.3 Western blot法检测海马组织NF-κBp65 蛋白含量 | 第48页 |
2.4 ELISA法检测血清中TNF-α 与IL-6 浓度 | 第48页 |
2.5 海马组织中iNOS活力与NO浓度的检测 | 第48页 |
2.6 数据分析 | 第48-49页 |
3 结果 | 第49-50页 |
3.1 各组大鼠血清中TNF-α 与IL-6 浓度 | 第49页 |
3.2 各组大鼠海马组织中NF-κBp65 含量 | 第49-50页 |
3.3 各组大鼠海马组织中iNOS活力与NO浓度 | 第50页 |
4 讨论 | 第50-52页 |
4.1 炎性信号分子TNF-α 和IL-6 可激活NF-κB,触发炎症级联反应 | 第50-51页 |
4.2 NF-κB促进iNOS以及NO表达,引起氧化应激级联反应 | 第51-52页 |
4.3 Res通过调控NF-κB炎性信号通路抑制脑内炎症 | 第52页 |
5 结论 | 第52-53页 |
本文小结 | 第53-54页 |
参考文献 | 第54-60页 |
综述 | 第60-68页 |
参考文献 | 第66-68页 |
致谢 | 第68-69页 |
在学期间承担/参与的科研课题与研究成果 | 第69-70页 |
个人简历 | 第70页 |