中英文缩略词表 | 第7-9页 |
中文摘要 | 第9-11页 |
Abstract | 第11-12页 |
1 引言 | 第13-17页 |
2 材料与方法 | 第17-33页 |
2.1 材料 | 第17-20页 |
2.1.1 实验动物 | 第17页 |
2.1.2 主要试剂和仪器 | 第17-20页 |
2.1.3 部分试剂配制及储存方法 | 第20页 |
2.2 方法 | 第20-32页 |
2.2.1 C57BL/6小鼠BMSCs体外培养 | 第20-21页 |
2.2.2 C57BL/6小鼠脾脏T淋巴细胞体外培养 | 第21页 |
2.2.3 梯度浓度β-TCP材料浸提液和上清液的制备 | 第21-22页 |
2.2.4 β-TCP材料浸提液对T淋巴细胞活性的影响 | 第22-23页 |
2.2.5 流式细胞术检测T淋巴细胞表面标志物的表达 | 第23-24页 |
2.2.6 细胞激光共聚焦检测T淋巴细胞表面标志物的表达 | 第24-25页 |
2.2.7 ELISA法检测上清液中IL-17A的分泌量 | 第25-26页 |
2.2.8 qRT-PCR测定成骨相关基因的mRNA表达 | 第26-28页 |
2.2.9 Western blot检测成骨相关蛋白的表达 | 第28-31页 |
2.2.10 ALP和茜素红染色 | 第31-32页 |
2.2.11 IL-17A抗体中和实验 | 第32页 |
2.3 统计学处理 | 第32-33页 |
3 结果 | 第33-41页 |
3.1 β-TCP材料浸提液对T淋巴细胞活性的影响 | 第33-34页 |
3.2 β-TCP材料浸提液诱导Th17细胞分化的作用 | 第34-37页 |
3.3 上清液作用于小鼠BMSCs后成骨相关基因的表达 | 第37页 |
3.4 上清液作用于小鼠BMSCs后成骨相关蛋白的表达 | 第37-38页 |
3.5 ALP和茜素红染色结果 | 第38-39页 |
3.6 IL-17A中和实验对小鼠BMSCs成骨分化的作用 | 第39-41页 |
4 讨论 | 第41-43页 |
5 结论 | 第43页 |
6 参考文献 | 第43-50页 |
附录 | 第50-51页 |
致谢 | 第51-53页 |
综述 | 第53-60页 |
参考文献 | 第57-60页 |