| 摘要 | 第4-5页 |
| Abstract | 第5页 |
| 第一部分 文献综述 | 第8-24页 |
| 1 甜瓜白粉病菌的研究进展 | 第8-10页 |
| 1.1 甜瓜白粉病原菌的种类 | 第8-9页 |
| 1.2 甜瓜白粉病原菌生理小种的鉴定 | 第9-10页 |
| 2 甜瓜抗白粉病抗病基因的研究进展 | 第10-14页 |
| 2.1 甜瓜白粉病抗病基因的种类和遗传规律 | 第10-13页 |
| 2.2 甜瓜抗白粉病基因定位的研究进展 | 第13-14页 |
| 3 分子标记在甜瓜研究中的应用 | 第14-18页 |
| 3.1 分子标记的种类 | 第14-15页 |
| 3.2 分子标记在甜瓜抗病育种中的应用 | 第15-16页 |
| 3.3 分子标记在构建甜瓜遗传连锁图谱中的应用 | 第16-18页 |
| 4 蛋白质组学的研究进展 | 第18-22页 |
| 4.1 蛋白组学的产生与发展 | 第18页 |
| 4.2 蛋白组学研究的相关技术 | 第18-22页 |
| 4.2.1 双向聚丙烯酰胺凝胶电泳 | 第19-20页 |
| 4.2.2 质谱技术 | 第20-22页 |
| 5 本研究的目的与意义 | 第22-24页 |
| 第二部分 研究正文 | 第24-46页 |
| 第一章 甜瓜抗白粉病相关基因定位分子标记的选择 | 第24-34页 |
| 1 材料与方法 | 第24-30页 |
| 1.1 实验材料 | 第24页 |
| 1.2 主要试剂 | 第24-25页 |
| 1.3 实验仪器 | 第25页 |
| 1.4 实验方法 | 第25-30页 |
| 1.4.1 甜瓜基因组 DNA 的提取 | 第25-26页 |
| 1.4.2 DNA 浓度与质量测定 | 第26页 |
| 1.4.3 设计特异引物 | 第26-27页 |
| 1.4.4 SSR 多态性标记的筛选和扩增 | 第27-29页 |
| 1.4.5 PCR 扩增产物的电泳检测 | 第29-30页 |
| 2 结果与分析 | 第30-32页 |
| 2.1 甜瓜基因组 DNA 的提取 | 第30页 |
| 2.2 PCR 扩增产物的预电泳 | 第30-31页 |
| 2.3 筛选甜瓜抗白粉病基因 SSR 分子标记 | 第31-32页 |
| 3 讨论 | 第32-34页 |
| 第二章 甜瓜抗白粉病相关蛋白的分离与鉴定 | 第34-46页 |
| 1 材料与方法 | 第34-40页 |
| 1.1 实验材料 | 第34页 |
| 1.2 主要试剂 | 第34页 |
| 1.3 主要仪器 | 第34页 |
| 1.4 实验方法 | 第34-40页 |
| 1.4.1 甜瓜叶片蛋白质样本制备方法 | 第34-36页 |
| 1.4.1.1 Mg/NP-40/PEG3350/TCA 丙酮提取法 | 第34-35页 |
| 1.4.1.2 Tirs-酚提取法 | 第35-36页 |
| 1.4.2 蛋白质含量的测定 | 第36-38页 |
| 1.4.2.1 Bradford 法测定蛋白含量 | 第36-37页 |
| 1.4.2.2 单向 SDS-PAGE 电泳 | 第37-38页 |
| 1.4.3 双向电泳 | 第38-40页 |
| 1.4.3.1 第一向固相 pH 梯度等点聚焦电泳(IEF) | 第38-39页 |
| 1.4.3.2 第二向 SDS-PAGE 电泳 | 第39-40页 |
| 2 结果与分析 | 第40-44页 |
| 2.1 蛋白质提取方法的比较 | 第40-41页 |
| 2.2 聚焦时间的优化 | 第41-42页 |
| 2.3 上样量的优化 | 第42-43页 |
| 2.4 接菌后甜瓜叶片蛋白双向电泳分析图谱 | 第43-44页 |
| 3 讨论 | 第44-46页 |
| 第三部分 结论 | 第46-47页 |
| 参考文献 | 第47-54页 |
| 附录 | 第54-57页 |
| 在读期间发表论文 | 第57-58页 |
| 致谢 | 第58页 |