| 摘要 | 第3-5页 |
| ABSTRACT | 第5-7页 |
| 第1章 引言 | 第11-13页 |
| 第2章 材料与方法 | 第13-26页 |
| 2.1 实验材料 | 第13-15页 |
| 2.1.1 细胞 | 第13页 |
| 2.1.2 主要试剂及耗材 | 第13-14页 |
| 2.1.3 主要仪器 | 第14-15页 |
| 2.2 实验方法 | 第15-25页 |
| 2.2.1 实验器材的准备 | 第15页 |
| 2.2.2 相关液体的配制 | 第15-18页 |
| 2.2.3 H9C2 细胞的体外培养 | 第18-19页 |
| 2.2.4 实验分组 | 第19页 |
| 2.2.5 CCK-8 检测各组 H9C2 细胞活性 | 第19-20页 |
| 2.2.6 DCFH-DA 法检测各组细胞内活性氧水平 | 第20页 |
| 2.2.7 罗丹明 123 荧光染色观察线粒体膜电位变化 | 第20页 |
| 2.2.8 qRT-PCR 检测各组 H9C2 细胞 Bax、Bcl-2 mRNA 的表达 | 第20-22页 |
| 2.2.9 Western blot 检测各组 H9C2 细胞 Cleaved Caspase-3 蛋白的表达 | 第22-25页 |
| 2.3 统计学分析 | 第25-26页 |
| 第3章 结果 | 第26-37页 |
| 3.1 H9C2 细胞的生长特点 | 第26页 |
| 3.2 CCK-8 法检测各组 H9C2 细胞的活性 | 第26-27页 |
| 3.3 DCFH-DA 法检测各组细胞内活性氧水平 | 第27-29页 |
| 3.4 罗丹明 123 检测 H9C2 细胞线粒体膜电位变化 | 第29-31页 |
| 3.5 qRT-PCR 检测各组 H9C2 细胞 Bax 和 Bcl-2 mRNA 的表达 | 第31-34页 |
| 3.6 Western blot 检测各组 H9C2 细胞 Cleaved Caspase-3 蛋白的表达 | 第34-35页 |
| 3.7 Annexin V-FITC/PI 法检测细胞凋亡 | 第35-37页 |
| 第4章 讨论 | 第37-40页 |
| 4.1 线粒体参与高糖所诱导的凋亡 | 第37-38页 |
| 4.2 LXRs 通过减轻凋亡保护高糖所致的细胞损伤 | 第38-39页 |
| 4.3 LXRs 与高糖所致细胞凋亡间的关系 | 第39-40页 |
| 第5章 结论与展望 | 第40-41页 |
| 5.1 结论 | 第40页 |
| 5.2 展望 | 第40-41页 |
| 致谢 | 第41-42页 |
| 参考文献 | 第42-45页 |
| 综述 | 第45-50页 |
| 参考文献 | 第49-50页 |
