| 中文摘要 | 第8-11页 |
| 英文摘要 | 第11-14页 |
| 前言 | 第15-16页 |
| 材料和方法 | 第16-22页 |
| 一、实验材料 | 第16-17页 |
| 1 仪器 | 第16页 |
| 2 药品与试剂 | 第16-17页 |
| 3 细胞株与动物 | 第17页 |
| 二、方法 | 第17-22页 |
| 1 主动靶向纳米粒制备和处方工艺优化 | 第17-19页 |
| 1.1 主动靶向纳米粒的制备 | 第17页 |
| 1.2 包封率和载药量的测定 | 第17-18页 |
| 1.3 粒径、Zeta电位的检测 | 第18页 |
| 1.4 效应面法优化处方设计 | 第18-19页 |
| 2 主动靶向纳米粒靶向性考察 | 第19-21页 |
| 2.1 体外细胞实验 | 第19-20页 |
| 2.2 动物实验 | 第20-21页 |
| 3 主动靶向纳米粒抑制肿瘤转移作用的研究 | 第21-22页 |
| 3.1 建立肿瘤转移模型 | 第21页 |
| 3.2 分组给药及处理 | 第21页 |
| 3.3 免疫组织化学 | 第21-22页 |
| 4 统计学处理 | 第22页 |
| 结果 | 第22-39页 |
| 1. 主动靶向纳米粒制备和处方工艺优化 | 第22-28页 |
| 1.1 HPLC方法专属性及川芎嗪标准曲线 | 第22-23页 |
| 1.2 精密度和回收率 | 第23页 |
| 1.3 Box-Behnken实验设计优化结果 | 第23-28页 |
| 1.4 FA-CS-LZ-NPs粒径分析及Zeta电位 | 第28页 |
| 2. 主动靶向纳米粒体外靶向性考察 | 第28-31页 |
| 2.1 细胞叶酸受体表达情况 | 第28-29页 |
| 2.2 主动靶向纳米粒的细胞毒性 | 第29-30页 |
| 2.3 HPLC检测细胞内川芎嗪的摄取 | 第30页 |
| 2.4 主动靶向纳米粒的叶酸受体依赖靶向性 | 第30-31页 |
| 3. 主动靶向纳米粒的体内靶向性考察 | 第31-36页 |
| 3.1 FITC-FA-CS的结构表征 | 第31-32页 |
| 3.2 FITC-FA-CS-Nps活体成像 | 第32-33页 |
| 3.3 主动靶向纳米粒体内分布 | 第33-36页 |
| 4. 川芎嗪主动靶向纳米粒抑制肿瘤转移作用的研究 | 第36-39页 |
| 4.1 FA-CS-LZ-NPs对H22转移模型体重的影响 | 第36页 |
| 4.2 肿瘤原发灶MMP和VEGF表达变化 | 第36-38页 |
| 4.3 对肺部转移瘤的影响 | 第38-39页 |
| 讨论 | 第39-41页 |
| 结论 | 第41-42页 |
| 参考文献 | 第42-46页 |
| 综述 | 第46-56页 |
| 参考文献 | 第52-56页 |
| 致谢 | 第56-57页 |