| 缩略语表 | 第1-8页 |
| 中文摘要 | 第8-11页 |
| Abstract | 第11-16页 |
| 前言 | 第16-18页 |
| 文献回顾 | 第18-39页 |
| 文献回顾一 | 第18-25页 |
| 文献回顾二 | 第25-32页 |
| 文献回顾三 | 第32-39页 |
| 实验一 | 第39-47页 |
| 引言 | 第39页 |
| 1 材料 | 第39-40页 |
| 2 方法 | 第40-42页 |
| ·大鼠部分肝切除损伤模型建立 | 第40-41页 |
| ·实验分组 | 第40页 |
| ·损伤模型建立 | 第40-41页 |
| ·实验大鼠血清ALT、AST和C-反应蛋白检测，肝组织病理学检测 | 第41-42页 |
| ·大鼠血清样品收集 | 第41页 |
| ·大鼠血清ALT、AST和C-反应蛋白检测 | 第41-42页 |
| ·大鼠肝组织病理学检测 | 第42页 |
| 3 结果 | 第42-44页 |
| ·部分肝切除术后大鼠血清ALT、AST的变化情况 | 第42-43页 |
| ·部分肝切除术后大鼠血清C-反应蛋白的变化情况 | 第43-44页 |
| ·部分肝切除术后大鼠肝组织病理学改变情况 | 第44页 |
| 4 讨论 | 第44-47页 |
| 实验二 | 第47-60页 |
| 引言 | 第47页 |
| 1 材料 | 第47-48页 |
| ·实验动物 | 第47页 |
| ·miRNA芯片 | 第47页 |
| ·主要试剂 | 第47-48页 |
| ·主要实验设备 | 第48页 |
| 2 方法 | 第48-55页 |
| ·miRNA表达谱芯片检测 | 第48-52页 |
| ·样品准备 | 第48页 |
| ·提取血清总RNA | 第48-49页 |
| ·RNA质量检测 | 第49-50页 |
| ·miRNA标记(miRCURYTMArray Power Labelling kit, exiqon公司) | 第50-51页 |
| ·miRNA芯片杂交(miRCURYTM Array microarray kit, Exiqon公司) | 第51-52页 |
| ·miRNA芯片图象扫描和分析 | 第52页 |
| ·Real time RT-PCR 验证候选 miRNA 在血清中的表达水平 | 第52-55页 |
| 3 结果 | 第55-58页 |
| ·腹部创伤应激后血清miRNA表达谱差异的鉴定 | 第55-57页 |
| ·Real-time RT-PCR验证候选miRNA表达水平 | 第57-58页 |
| 4 讨论 | 第58-60页 |
| 实验三 | 第60-72页 |
| 引言 | 第60页 |
| 1 材料 | 第60-61页 |
| ·实验动物和试剂 | 第60页 |
| ·主要试剂 | 第60-61页 |
| ·主要实验设备 | 第61页 |
| 2 方法 | 第61-65页 |
| ·大鼠部分肝切除损伤模型建立方法同前 | 第61页 |
| ·样品准备 | 第61-63页 |
| ·血清样本准备同前 | 第61页 |
| ·组织样本 | 第61页 |
| ·细胞样本 | 第61-63页 |
| ·Real time RT-PCR检测miR-9 表达水平 | 第63-64页 |
| ·提取总RNA | 第63页 |
| ·Real time RT-PCR的引物设计同前 | 第63页 |
| ·miRNA逆转录 | 第63-64页 |
| ·Realtime PCR反应 | 第64页 |
| ·Realtime PCR结果与计算 | 第64页 |
| ·统计学分析 | 第64-65页 |
| 3 结果 | 第65-68页 |
| ·血清miR-9 的表达可以作为评估创伤早期严重程度的指标 | 第65-66页 |
| ·血清miR-9 的来源及其在其他组织器官的表达 | 第66-68页 |
| 4 讨论 | 第68-72页 |
| 小结 | 第72-73页 |
| 参考文献 | 第73-86页 |
| 附录 | 第86-91页 |
| 英文论著 | 第91-112页 |
| 个人简历和研究成果 | 第112-113页 |
| 致谢 | 第113页 |
