| 前言 | 第4-6页 |
| 中文摘要 | 第6-8页 |
| Abstract | 第8-10页 |
| 中英文缩略词对照表 | 第13-14页 |
| 第1章 综述 | 第14-28页 |
| 1.1 长期饮酒对肠道细菌增殖及内毒素吸收的影响 | 第14-16页 |
| 1.1.1 酒精对于肠道菌群的作用 | 第14-15页 |
| 1.1.2 酒精对于肠道通透性的作用 | 第15-16页 |
| 1.2 TLR4与其配体的分布和结构特征 | 第16-18页 |
| 1.3 LPS-TLR4信号通路 | 第18-24页 |
| 1.3.1 LPS-TLR4信号通路 | 第18-20页 |
| 1.3.2 LPS-TLR4通路与NF-κB通路的关系 | 第20-21页 |
| 1.3.3 LPS-TLR4通路和TGF-β/Smad通路的关系 | 第21-24页 |
| 1.4 LPS在酒精性肝炎和肝纤维化发生中的作用及机制 | 第24-25页 |
| 1.5 LPS在酒精性胰腺炎和胰腺纤维化发生中的作用及机制研究现状 | 第25-26页 |
| 1.6 酒精性胰腺炎和胰腺纤维化的研究现状及存在的问题 | 第26-28页 |
| 第2章 大鼠实验模型研究LPS在胰腺纤维化发生中的作用 | 第28-60页 |
| 2.1 实验材料 | 第28-31页 |
| 2.1.1 试剂及液体配置 | 第28-30页 |
| 2.1.2 实验仪器 | 第30-31页 |
| 2.1.3 实验动物和伦理声明 | 第31页 |
| 2.2 实验方法 | 第31-43页 |
| 2.2.1 动物模型制备 | 第31页 |
| 2.2.2 大鼠胰腺组织块留取： | 第31-32页 |
| 2.2.3 石蜡包埋组织和切片 | 第32页 |
| 2.2.4 HE染色步骤 | 第32-33页 |
| 2.2.5 大鼠胰腺苯胺蓝胶原染色 | 第33-34页 |
| 2.2.6 ELISA法检测大鼠胰腺I型胶原A1 | 第34-35页 |
| 2.2.7 免疫组织化学检测大鼠胰腺组织FSP-1 | 第35-36页 |
| 2.2.8 免疫组织化学检测大鼠胰腺组织F4/80 | 第36-37页 |
| 2.2.9 免疫荧光双染检测胰腺组织巨噬细胞TLR4的表达 | 第37-38页 |
| 2.2.10 免疫荧光双染检测胰腺组织PSC TLR4表达 | 第38-39页 |
| 2.2.11 免疫荧光双染检测胰腺组织巨噬细胞TGF-β1 | 第39-40页 |
| 2.2.12 大鼠胰腺组织RNA提取 | 第40页 |
| 2.2.13 大鼠胰腺组织c DNA制备 | 第40-41页 |
| 2.2.14 荧光定量q RT- PCR检测 | 第41-42页 |
| 2.2.15 统计学方法 | 第42-43页 |
| 2.3 结果 | 第43-56页 |
| 2.3.1 第一节LPS在酒精摄入大鼠胰腺纤维化发生中的作用 | 第43-50页 |
| 2.3.2 第二节LPS诱发正常大鼠胰腺炎症和纤维化的实验研究 | 第50-56页 |
| 2.4 讨论 | 第56-60页 |
| 第3章 LPS在作用下大鼠PSC介导胰腺纤维化发生中的作用及机制 | 第60-78页 |
| 3.1 实验材料 | 第60-65页 |
| 3.2 RP-2 细胞模型制备 | 第65-66页 |
| 3.3 RP-2 细胞m RNA和蛋白测定 | 第66-70页 |
| 3.3.1 细胞m RNA测定 | 第66-67页 |
| 3.3.2 RP-2 细胞蛋白测定 | 第67-69页 |
| 3.3.3 统计学方法 | 第69-70页 |
| 3.4 结果 | 第70-73页 |
| 3.4.1 LPS在RP-2 细胞上对I型胶原m RNA和蛋白表达的作用 | 第70-71页 |
| 3.4.2 LPS-TLR4途径对RP-2 细胞Bambi m RNA和蛋白表达的作用 | 第71-72页 |
| 3.4.3 LPS对RP-2 细胞TGF-β1 诱导的Smad2和Smad3磷酸化的作用 | 第72页 |
| 3.4.4 LPS-TLR4途径对RP-2 细胞NFκB通路的调控作用 | 第72-73页 |
| 3.5 讨论 | 第73-78页 |
| 第4章 结论 | 第78-80页 |
| 参考文献 | 第80-93页 |
| 作者简介及在学期间所取得的科研成果 | 第93-94页 |
| 致谢 | 第94页 |
