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玉米皮固态培养混合益生菌的研究

摘要第4-5页
Abstract第5-6页
引言第10-11页
1 文献综述第11-27页
    1.1 玉米皮第11-16页
        1.1.1 玉米皮来源第11-12页
        1.1.2 米皮的结构第12-14页
        1.1.3 玉米皮物质提取方面应用现状第14-16页
    1.2 纤维素酶第16-19页
        1.2.1 纤维素酶的研究意义第16-17页
        1.2.2 纤维素酶的作用机理第17页
        1.2.3 纤维素酶产生菌第17-19页
    1.3 黑曲霉第19-20页
        1.3.1 黑曲霉的生长特性第19页
        1.3.2 黑曲霉的安全性第19-20页
    1.4 固态发酵研究进展第20-26页
        1.4.1 固态发酵技术第20-21页
        1.4.2 固态发酵设备第21-22页
        1.4.3 混菌固态培养第22-23页
        1.4.4 玉米皮固态发酵研究第23-26页
    1.5 本课题研究内容及意义第26-27页
2 黑曲霉种子培养条件的优化第27-39页
    2.1 引言第27页
    2.2 实验材料与仪器第27-28页
        2.2.1 实验材料第27页
        2.2.2 培养基第27页
        2.2.3 实验试剂第27-28页
        2.2.4 实验仪器第28页
    2.3 实验方法第28-31页
        2.3.1 种子的活化第28页
        2.3.2 摇瓶培养第28-29页
        2.3.3 发酵罐培养第29页
        2.3.4 分析方法第29-31页
    2.4 结果与讨论第31-38页
        2.4.1 初始pH对黑曲霉生长的影响第31-33页
        2.4.2 转速对黑曲霉生长的影响第33-34页
        2.4.3 通气量对黑曲霉生长的影响第34-35页
        2.4.4 不同的辅助碳源对黑曲霉生长的影响第35-38页
    2.5 本章小结第38-39页
3. 固态培养黑曲霉条件的优化第39-59页
    3.1 引言第39页
    3.2 实验材料与仪器第39-40页
        3.2.1 实验材料第39页
        3.2.2 培养基第39-40页
        3.2.3 实验试剂第40页
        3.2.4 实验仪器第40页
    3.3 实验方法第40-44页
        3.3.1 种子的活化第40页
        3.3.2 种子的培养第40页
        3.3.3 固态培养第40页
        3.3.4 分析方法第40-44页
        3.3.5 数据统计方法第44页
    3.4 结果与讨论第44-58页
        3.4.1 无机氮对黑曲霉固态培养的影响第44-46页
        3.4.2 料液比对黑曲霉固态培养的影响第46-48页
        3.4.3 麸皮添加量对黑曲霉固态培养的影响第48-51页
        3.4.4 培养时间对黑曲霉固态培养的影响第51-53页
        3.4.5 接种量的影响第53-56页
        3.4.6 正交试验优化固态培养条件第56-58页
    3.5 本章小结第58-59页
4 玉米皮固态培养混合益生菌第59-66页
    4.1 引言第59页
    4.2 实验材料与方法第59-60页
        4.2.1 实验材料第59页
        4.2.2 培养基第59-60页
        4.2.3 实验试剂第60页
        4.2.4 实验仪器第60页
    4.3 实验方法第60页
        4.3.1 种子的活化第60页
        4.3.2 种子的培养第60页
        4.3.3 固态培养第60页
        4.3.4 分析方法第60页
    4.4 结果与讨论第60-65页
        4.4.1 乳酸菌与酿酒酵母的接种比例对混菌培养的影响第60-62页
        4.4.2 酿酒酵母与黑曲霉共培养时间对混菌培养的影响第62-64页
        4.4.3 混菌接种比例对固态培养的影响第64-65页
    4.5 本章小结第65-66页
结论第66-67页
参考文献第67-73页
攻读硕士学位期间发表学术论文情况第73-74页
致谢第74-75页

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