| 摘要 | 第3-5页 |
| ABSTRACT | 第5-6页 |
| 第一章 前言 | 第10-24页 |
| 1.1 立题背景 | 第10-11页 |
| 1.2 葡甘低聚糖 | 第11-16页 |
| 1.2.1 葡甘低聚糖的来源 | 第11页 |
| 1.2.2 葡甘低聚糖的结构、理化性质 | 第11-12页 |
| 1.2.3 葡甘低聚糖的生理功能 | 第12-15页 |
| 1.2.4 葡甘低聚糖的应用 | 第15-16页 |
| 1.3 葡甘低聚糖制备的国内外研究进展 | 第16-22页 |
| 1.3.1 葡甘低聚糖的制备 | 第16-17页 |
| 1.3.2 β-甘露聚糖酶 | 第17-18页 |
| 1.3.3 葡甘低聚糖的分离纯化 | 第18-19页 |
| 1.3.4 葡甘低聚糖的检测 | 第19-21页 |
| 1.3.5 基因工程菌Rossate-pET32a-CH3 | 第21-22页 |
| 1.3.6 全细胞催化 | 第22页 |
| 1.4 本课题研究的目的、意义和研究内容 | 第22-24页 |
| 1.4.1 研究目的和意义 | 第22-23页 |
| 1.4.2 研究内容 | 第23-24页 |
| 第二章 全细胞催化制备葡甘低聚糖水解工艺条件研究 | 第24-38页 |
| 2.1 引言 | 第24页 |
| 2.2 材料和设备 | 第24-26页 |
| 2.2.1 试验材料 | 第24-25页 |
| 2.2.2 试剂配制 | 第25-26页 |
| 2.3 试验方法 | 第26-29页 |
| 2.3.1 β-甘露聚糖酶活力的测定 | 第26-27页 |
| 2.3.2 魔芋粉总糖的测定 | 第27页 |
| 2.3.3 魔芋粉水解率的测定 | 第27页 |
| 2.3.4 葡甘低聚糖制备条件优化试验设计 | 第27-29页 |
| 2.4 结果与分析 | 第29-36页 |
| 2.4.1 D-甘露糖标准曲线 | 第29页 |
| 2.4.2 魔芋粉总糖含量测定 | 第29-30页 |
| 2.4.3 魔芋粉酶解的单因素试验 | 第30-32页 |
| 2.4.4 魔芋粉酶解的响应面试验 | 第32-36页 |
| 2.5 讨论 | 第36-38页 |
| 第三章 酶解产物的检测 | 第38-44页 |
| 3.1 引言 | 第38页 |
| 3.2 材料和方法 | 第38-39页 |
| 3.2.1 试验材料 | 第38页 |
| 3.2.2 酶解产物的制备 | 第38-39页 |
| 3.2.3 酶解产物的薄层色谱检测分析 | 第39页 |
| 3.2.4 酶解产物的高效液相色谱分析 | 第39页 |
| 3.3 结果与分析 | 第39-41页 |
| 3.3.1 酶解产物的薄层色谱结果 | 第39-40页 |
| 3.3.2 酶解产物的高效液相色谱结果 | 第40-41页 |
| 3.4 讨论 | 第41-44页 |
| 第四章 葡甘低聚糖的去除单糖和脱色工艺 | 第44-54页 |
| 4.1 引言 | 第44页 |
| 4.2 材料和方法 | 第44-47页 |
| 4.2.1 试验材料 | 第44-45页 |
| 4.2.3 葡甘低聚糖干粉的制备 | 第45页 |
| 4.2.4 葡甘低聚糖单糖去除 | 第45-46页 |
| 4.2.5 葡甘低聚糖脱色 | 第46-47页 |
| 4.3 结果与分析 | 第47-53页 |
| 4.3.1 葡甘低聚糖单糖去除 | 第47-51页 |
| 4.3.2 葡甘低聚糖脱色 | 第51-53页 |
| 4.5 讨论 | 第53-54页 |
| 第五章 结论 | 第54-56页 |
| 参考文献 | 第56-62页 |
| 致谢 | 第62-64页 |
| 攻读学位期间发表的学术论文目录 | 第64-66页 |