| 摘要 | 第3-5页 |
| Abstract | 第5-7页 |
| 缩略词表 | 第12-13页 |
| 第1章 前言 | 第13-35页 |
| 1.1 CCDC152概述 | 第13-14页 |
| 1.2 神经可塑性与疾病 | 第14-16页 |
| 1.3 神经可塑性相关分子简介 | 第16-18页 |
| 1.3.1 早期生长反应因子(Early growth response factor, Egr) | 第16-17页 |
| 1.3.2 钙依赖中性蛋白酶1(Calcium dependent on neutral protease 1,Calpain 1)与微管相关蛋白2 (microtuble-associated protein2, MAP2) | 第17页 |
| 1.3.3 半胱氨酸天门冬氨酸蛋白酶9(Cysteine aspartic protease 9,Caspase 9)与脑源性神经营养因子(Brain derived neurotrophic factor,BDNF) | 第17页 |
| 1.3.4 热休克蛋白70(Heat shock protein 70, HSP70)与热休克蛋白A6(Heat shock70 k Da protein 6,HSPA6) | 第17-18页 |
| 1.3.5 突触囊泡蛋白(Synaptic vesicle proteins, SYP)和神经胶质蛋白Ⅱ(Neurabin-Ⅱ) | 第18页 |
| 1.4 CCDC152相关信号通路 | 第18-32页 |
| 1.4.1 G蛋白偶联受体系统 | 第18-23页 |
| 1.4.2 Wnt系统及其与神经可塑性 | 第23-25页 |
| 1.4.3 RhoA/ROCK信号通路及其与神经可塑性 | 第25-29页 |
| 1.4.4 Hippo信号通路及其与神经可塑性 | 第29-32页 |
| 1.5 问题的提出 | 第32页 |
| 1.6 研究的目的与意义 | 第32页 |
| 1.7 研究思路 | 第32-35页 |
| 第2章 材料、仪器与方法 | 第35-49页 |
| 2.1 实验材料 | 第35页 |
| 2.1.1 细胞材料 | 第35页 |
| 2.1.2 其他实验材料 | 第35页 |
| 2.2 实验仪器 | 第35-37页 |
| 2.2.1 主要仪器 | 第35-36页 |
| 2.2.2 试剂盒 | 第36页 |
| 2.2.3 主要试剂 | 第36-37页 |
| 2.2.4 主要抗体 | 第37页 |
| 2.3 实验方法 | 第37-47页 |
| 2.3.1 贴壁细胞的培养 | 第37-38页 |
| 2.3.2 贴壁细胞的瞬时转染 | 第38-40页 |
| 2.3.3 质粒的制备 | 第40-41页 |
| 2.3.4 贴壁细胞蛋白的收集与定量 | 第41-42页 |
| 2.3.5 Westen Blot蛋白检测流程 | 第42-43页 |
| 2.3.6 Luciferance荧光素酶报告基因检测流程 | 第43-44页 |
| 2.3.7 ELISA检测第二信使cAMP浓度的方法 | 第44-45页 |
| 2.3.8 流式细胞仪检测HT22细胞内Ca~(2+)浓度 | 第45-46页 |
| 2.3.9 鬼笔环肽F-actin染色 | 第46页 |
| 2.3.10 实验用试剂的配制方法 | 第46-47页 |
| 2.4 数据处理与统计分析 | 第47-49页 |
| 第3章 CCDC152在DOI诱导下的表达变化 | 第49-55页 |
| 3.1 CCDC152启动子区在不同浓度DOI处理下的激活情况 | 第49-50页 |
| 3.1.1 材料与方法 | 第49页 |
| 3.1.2 结果与分析 | 第49-50页 |
| 3.1.3 讨论 | 第50页 |
| 3.2 CCDC152在不同浓度DOI处理后的表达变化 | 第50-51页 |
| 3.2.1 材料与方法 | 第50页 |
| 3.2.2 结果与分析 | 第50-51页 |
| 3.2.3 讨论 | 第51页 |
| 3.3 CCDC152在HT22细胞中用不同时间DOI处理后的表达变化 | 第51-53页 |
| 3.3.1 1h内DOI处理对HT22细胞CCDC152表达的影响 | 第51-52页 |
| 3.3.2 0-48h DOI处理对HT22细胞CCDC152表达的影响 | 第52-53页 |
| 3.4 本章小结 | 第53-55页 |
| 第4章 CCDC152相关的表达通路研究 | 第55-63页 |
| 4.1 PTX(Gαi的抑制剂)处理16h后,HT22细胞CCDC152蛋白表达情况 | 第55-56页 |
| 4.1.1 材料与方法 | 第55页 |
| 4.1.2 结果与分析 | 第55-56页 |
| 4.1.3 分析 | 第56页 |
| 4.2 不同试剂预处理(48h) HT22细胞后,DOI处理对CCDC152表达的影响 | 第56-58页 |
| 4.2.1 材料与方法 | 第56页 |
| 4.2.2 结果与分析 | 第56-57页 |
| 4.2.3 讨论 | 第57-58页 |
| 4.3 CCDC152过表达或干涉后加DOI对cAMP含量变化的影响 | 第58-59页 |
| 4.3.1 材料与方法 | 第58页 |
| 4.3.2 结果与分析 | 第58页 |
| 4.3.3 讨论 | 第58-59页 |
| 4.4 CCDC152过表达或干涉对Ca~(2+)变化的影响 | 第59-60页 |
| 4.4.1 材料与方法 | 第59页 |
| 4.4.2 结果与分析 | 第59-60页 |
| 4.4.3 讨论 | 第60页 |
| 4.5 干涉Gαq对CCDC152表达的影响 | 第60-61页 |
| 4.5.1 材料与方法 | 第60页 |
| 4.5.2 结果与分析 | 第60页 |
| 4.5.3 讨论 | 第60-61页 |
| 4.6 本章小结 | 第61-63页 |
| 第5章 CCDC152在DOI调节下的表达对有关信号通路相关分子表达的影响 | 第63-67页 |
| 5.1 CCDC152过表达对相关的神经系统蛋白表达量的影响 | 第63-64页 |
| 5.1.1 材料与方法 | 第63页 |
| 5.1.2 结果与分析 | 第63-64页 |
| 5.1.3 讨论 | 第64页 |
| 5.2 CCDC152在DOI处理后的表达对各信号通路相关蛋白表达的影响 | 第64-66页 |
| 5.2.1 材料与方法 | 第64页 |
| 5.2.2 结果与分析 | 第64-65页 |
| 5.2.3 讨论 | 第65-66页 |
| 5.3 本章小结 | 第66-67页 |
| 第6章 CCDC152在LPA处理后的表达变化 | 第67-71页 |
| 6.1 不同浓度LPA处理对HT22细胞CCDC152表达的影响 | 第67-68页 |
| 6.1.1 材料与方法 | 第67页 |
| 6.1.2 结果与分析 | 第67-68页 |
| 6.1.3 讨论 | 第68页 |
| 6.2 不同时间LPA处理对HT22细胞CCDC152表达的影响 | 第68-69页 |
| 6.2.1 1h内LPA处理对HT22细胞CCDC152表达的影响 | 第68-69页 |
| 6.2.2 0-48h LPA处理对HT22细胞CCDC152表达的影响 | 第69页 |
| 6.3 本章小结 | 第69-71页 |
| 第7章 CCDC152在LPA处理后对相关信号通路的影响 | 第71-77页 |
| 7.1 CCDC152在HT22细胞中LPA处理后的表达对RhoA/ROCK系统相关蛋白表达的影响 | 第71-73页 |
| 7.1.1 材料与方法 | 第71页 |
| 7.1.2 结果与讨论 | 第71-72页 |
| 7.1.3 讨论 | 第72-73页 |
| 7.2 CCDC152在LPA诱导下对细胞骨架F-actin的影响 | 第73-74页 |
| 7.2.1 材料与方法 | 第73页 |
| 7.2.2 结果与分析 | 第73-74页 |
| 7.2.3 讨论 | 第74页 |
| 7.3 本章小结 | 第74-77页 |
| 第8章 结论与展望 | 第77-81页 |
| 参考文献 | 第81-97页 |
| 致谢 | 第97-99页 |
| 攻读硕士学位期间研究成果 | 第99页 |
