| 中文摘要 | 第5-7页 |
| Abstract | 第7-9页 |
| 第一章 前言 | 第13-24页 |
| 一. 肥胖与Ⅱ型糖尿病 | 第13-17页 |
| 1. 肥胖人群的分布及肥胖病 | 第13页 |
| 2. 肥胖与Ⅱ型糖尿病 | 第13-14页 |
| 3. Ⅱ型糖尿病与胰岛β细胞功能 | 第14-15页 |
| 4. 脂类代谢异常对胰岛β细胞的影响 | 第15-16页 |
| 5. 糖代谢异常与胰岛β细胞的损伤 | 第16-17页 |
| 6. 细胞因子参与胰岛β细胞损伤 | 第17页 |
| 7. 胰淀粉样蛋白对胰岛β细胞的影响 | 第17页 |
| 二、胰淀粉样蛋白与胰岛β细胞 | 第17-21页 |
| 1. 胰淀粉样蛋白的来源 | 第17-18页 |
| 2. IAPP的编码基因、蛋白结构 | 第18页 |
| 3. IAPP的生理功能 | 第18-19页 |
| 4. IAPP过多对胰岛β细胞的影响 | 第19页 |
| 5. IAPP的沉积及生化过程 | 第19页 |
| 6. Ⅱ型糖尿病发病过程中IAPP沉积及胰岛β细胞损伤 | 第19-20页 |
| 7. IAPP沉积导致胰岛β细胞损伤的体外实验 | 第20页 |
| 8. IAPP导致胰岛β细胞损伤的体内实验 | 第20-21页 |
| 三、Ⅱ型糖尿病胰岛细胞老化 | 第21-23页 |
| 1. 胰岛细胞老化的过程 | 第21页 |
| 2. 胰岛细胞老化之干细胞机制 | 第21-22页 |
| 3. 胰岛细胞老化之干细胞修复能力下降 | 第22-23页 |
| 四、研究的关键问题 | 第23-24页 |
| 第二章 材料和方法 | 第24-40页 |
| 第一部分 动物实验 | 第24-29页 |
| 一. 材料 | 第24页 |
| 1. 实验动物 | 第24页 |
| 2. 试剂名称 | 第24页 |
| 3. 主要仪器和设备 | 第24页 |
| 二. 方法 | 第24-29页 |
| 1. 实验动物处理及分组 | 第25页 |
| 2. 部分溶液的配制方法 | 第25-26页 |
| 3. 血糖、甘油三脂的测定 | 第26页 |
| 4. OGTT测定 | 第26页 |
| 5. 胰岛素耐量测定 | 第26页 |
| 6. 石蜡包埋 | 第26-27页 |
| 7. HE染色 | 第27页 |
| 8. 石蜡切片免疫荧光法检测胰岛中Insulin的表达 | 第27页 |
| 9. 石蜡切片免疫组化法检测P53、Insulin Receptor的表达 | 第27-28页 |
| 10. 免疫组化标记法计数P53阳性细胞的个数 | 第28页 |
| 11. 免疫组化标记法IR阳性区域测定 | 第28页 |
| 12. 半定量DAB染色Amylin阳性区域测定 | 第28页 |
| 13. 数据统计 | 第28-29页 |
| 第二部分 细胞实验 | 第29-40页 |
| 一. 材料 | 第29-30页 |
| 1. 实验用细胞 | 第29页 |
| 2. 试剂名称 | 第29-30页 |
| 3. 主要仪器设备 | 第30页 |
| 二. 方法 | 第30-40页 |
| 1. 细胞培养 | 第30-31页 |
| 2. 细胞复苏 | 第31页 |
| 3. 细胞传代 | 第31页 |
| 4. 细胞冻存 | 第31页 |
| 5. 部分溶液的配制方法 | 第31-34页 |
| 6. 细胞损伤的测定 | 第34-35页 |
| 7. 用ELISA试剂盒测Insulin的含量 | 第35-36页 |
| 8. Western blotting检测Insulin Receptor、P53、Amylin蛋白的表达 | 第36-38页 |
| 9. Q-RT-PCR方法检测Insulin、Amylin的mRNA的表达 | 第38-39页 |
| 10. 数据统计 | 第39-40页 |
| 第三章 结果 | 第40-52页 |
| 第一部分 动物实验结果 | 第40-41页 |
| 第二部分 细胞实验结果 | 第41-43页 |
| 附：结果部分图片及说明 | 第43-52页 |
| 第四章 讨论 | 第52-55页 |
| 第五章 结论 | 第55-56页 |
| 参考文献 | 第56-63页 |
| 在学期间研究成果 | 第63-64页 |
| 基金资助 | 第64-65页 |
| 致谢 | 第65页 |
