| 摘要 | 第9-12页 |
| Abstract | 第12-14页 |
| 缩略词表 | 第15-16页 |
| 第一章 引言 | 第16-30页 |
| 1.1 土壤中砷的来源、形态和水平 | 第16-18页 |
| 1.1.1 土壤砷来源 | 第16-17页 |
| 1.1.2 土壤砷形态 | 第17页 |
| 1.1.3 土壤砷水平 | 第17-18页 |
| 1.2 我国砷污染现状 | 第18页 |
| 1.3 砷污染土壤修复 | 第18-19页 |
| 1.3.1 砷污染土壤的修复方法 | 第18-19页 |
| 1.3.2 砷污染土壤的修复现状和超富集植物 | 第19页 |
| 1.4 杨树修复砷污染土壤的优势 | 第19-20页 |
| 1.5 植物对砷胁迫的响应 | 第20-24页 |
| 1.5.1 表型响应 | 第21页 |
| 1.5.2 生理生化水平上的响应 | 第21-23页 |
| 1.5.2.1 生理代谢 | 第21页 |
| 1.5.2.2 氧化胁迫 | 第21-23页 |
| 1.5.3 分子水平上的响应 | 第23-24页 |
| 1.5.3.1 高砷胁迫影响植物基因表达水平 | 第23页 |
| 1.5.3.2 高砷胁迫影响植物蛋白质的表达水平 | 第23页 |
| 1.5.3.3 高砷胁迫损害植物的超微结构 | 第23-24页 |
| 1.6 杨树对重金属胁迫的响应 | 第24-25页 |
| 1.6.1 形态、生理 | 第24页 |
| 1.6.2 蛋白质 | 第24-25页 |
| 1.7 杨树对重金属的吸收、富集、贮运 | 第25页 |
| 1.8 蛋白质组学的研究 | 第25-28页 |
| 1.8.1 蛋白质组学的产生 | 第25-26页 |
| 1.8.2 蛋白质组学的概念、研究策略 | 第26页 |
| 1.8.3 植物蛋白提取 | 第26页 |
| 1.8.4 蛋白质组分析技术 | 第26-28页 |
| 1.8.4.1 双向电泳 | 第27页 |
| 1.8.4.2 双向差异凝胶电泳 | 第27页 |
| 1.8.4.3 基质辅助激光解析电离飞行时间质谱 | 第27-28页 |
| 1.9 水稻对砷胁迫的响应 | 第28-29页 |
| 1.10 研究目的、意义和内容 | 第29-30页 |
| 第二章 水培筛选砷耐受型和敏感型杨树无性系 | 第30-41页 |
| 2.1 引言 | 第30页 |
| 2.2 试验材料与方法 | 第30-32页 |
| 2.2.1 试验材料 | 第30-31页 |
| 2.2.1.1 材料选择 | 第30-31页 |
| 2.2.1.2 材料培养与处理 | 第31页 |
| 2.2.2 试验方法 | 第31-32页 |
| 2.2.2.1 光合参数的测定 | 第31-32页 |
| 2.2.2.2 根、茎、叶砷含量的测定 | 第32页 |
| 2.2.3 杨树萃取能力的评价 | 第32页 |
| 2.2.4 统计分析 | 第32页 |
| 2.3 结果与分析 | 第32-37页 |
| 2.3.1 砷处理对杨树生长的影响 | 第32-33页 |
| 2.3.2 砷处理对杨树光合参数的影响 | 第33页 |
| 2.3.3 砷在根、茎、叶中的富集 | 第33-37页 |
| 2.3.4 杨树富集和转运能力的评价 | 第37页 |
| 2.4 讨论 | 第37-40页 |
| 2.5 小结 | 第40-41页 |
| 第三章 砷胁迫下杨树的生理响应 | 第41-53页 |
| 3.1 前言 | 第41页 |
| 3.2 试验材料与方法 | 第41-43页 |
| 3.2.1 试验材料 | 第41-42页 |
| 3.2.2 试验方法 | 第42-43页 |
| 3.2.2.1 光合色素含量的测定 | 第42页 |
| 3.2.2.2 根、叶O2.-和H2O2的定性测量 | 第42页 |
| 3.2.2.3 抗氧化酶活性的测定 | 第42-43页 |
| 3.2.2.4 GSH测定 | 第43页 |
| 3.3 结果与分析 | 第43-50页 |
| 3.3.1 光合色素含量的测定 | 第43-46页 |
| 3.3.2 45/51杨根、叶O2.-和H2O2的原位染色 | 第46页 |
| 3.3.3 ROS抗氧化酶的活性(SOD、POD、CAT、APX活性) | 第46页 |
| 3.3.4 GR活性和GSH浓度 | 第46-50页 |
| 3.4 讨论 | 第50-52页 |
| 3.5 小结 | 第52-53页 |
| 第四章 砷胁迫下杨树根的比较蛋白质组分析 | 第53-78页 |
| 4.1 引言 | 第53-54页 |
| 4.2 试验材料与方法 | 第54-57页 |
| 4.2.1 试验材料 | 第54页 |
| 4.2.2 试验方法 | 第54-57页 |
| 4.2.2.1 根总蛋白质的制备 | 第54-55页 |
| 4.2.2.2 蛋白单向电泳检测(小胶检测) | 第55页 |
| 4.2.2.3 蛋白双向电泳 | 第55-56页 |
| 4.2.2.4 胰蛋白酶酶解,脱盐 | 第56-57页 |
| 4.3 结果与分析 | 第57-59页 |
| 4.3.1 2025杨根差异表达蛋白质 | 第57页 |
| 4.3.2 45/51杨根差异表达蛋白质 | 第57-58页 |
| 4.3.3 2025杨根和45/51杨根共同鉴定的蛋白质 | 第58-59页 |
| 4.4 讨论 | 第59-67页 |
| 4.4.1 抗氧化胁迫和解毒蛋白 | 第59-62页 |
| 4.4.2 代谢相关蛋白 | 第62-64页 |
| 4.4.2.1 分解代谢相关蛋白 | 第62-63页 |
| 4.4.2.2 氨基酸代谢 | 第63-64页 |
| 4.4.3 胁迫相关蛋白 | 第64-65页 |
| 4.4.3.1 KTIs | 第64页 |
| 4.4.3.2 HSPs/分子伴侣 | 第64-65页 |
| 4.4.3.3 其他胁迫相关蛋白 | 第65页 |
| 4.4.4 蛋白合成、降解及其他代谢相关蛋白 | 第65-66页 |
| 4.4.5 其他蛋白 | 第66-67页 |
| 4.5 小结 | 第67-68页 |
| 表 | 第68-78页 |
| 第五章 水稻幼苗地上部分响应短期砷胁迫的比较蛋白质组学研究 | 第78-93页 |
| 5.1 前言 | 第78页 |
| 5.2 材料与方法 | 第78-79页 |
| 5.2.1 试验材料 | 第78-79页 |
| 5.2.2 试验方法 | 第79页 |
| 5.2.2.1 透射电子显微镜观察水稻幼苗根、叶细胞超微结构 | 第79页 |
| 5.2.2.2 其他同前文 | 第79页 |
| 5.3 结果与分析 | 第79-82页 |
| 5.3.1 砷处理对水稻幼苗生长的影响 | 第79页 |
| 5.3.2 砷在水稻幼苗根、地上部分的富集 | 第79-80页 |
| 5.3.3 砷对水稻幼苗根、叶超微结构的影响 | 第80-82页 |
| 5.3.4 砷胁迫下水稻幼苗地上部分差异表达蛋白质分析 | 第82页 |
| 5.4 讨论 | 第82-86页 |
| 5.4.1 砷抑制了水稻生长、损伤了细胞超微结构 | 第82-84页 |
| 5.4.2 砷胁迫抑制了水稻幼苗的基本代谢过程 | 第84-85页 |
| 5.4.3 砷胁迫诱导了氧化胁迫 | 第85页 |
| 5.4.4 砷胁迫诱导了细胞壁降解,结构损伤 | 第85-86页 |
| 5.5 小结 | 第86-87页 |
| 表 | 第87-93页 |
| 第六章 结论 | 第93-95页 |
| 6.1 砷处理导致生物膜变性,植物表现毒害症状 | 第93页 |
| 6.2 砷处理破坏叶绿体结构,妨碍光合作用,限制植物生长 | 第93页 |
| 6.3 砷处理产生氧化胁迫和毒性 | 第93-94页 |
| 6.4 砷处理诱导胁迫反应蛋白HSPs上调表达 | 第94页 |
| 6.5 砷处理诱导了PPP途径加强 | 第94页 |
| 6.6 砷处理增加了植物对砷的吸收、转运 | 第94-95页 |
| 参考文献 | 第95-112页 |
| 读博期间已发表和待发表论文情况 | 第112-113页 |
| 致谢 | 第113页 |
