| 摘要 | 第2-3页 |
| Abstract | 第3-4页 |
| 引言 | 第7-10页 |
| 材料与方法 | 第10-20页 |
| 1 受试细胞 | 第10页 |
| 2 主要试剂和材料 | 第10-11页 |
| 3 仪器设备 | 第11-12页 |
| 4 大鼠胸大动脉平滑肌细胞(VSMCs)培养技术 | 第12页 |
| 4.1 VSMCs的传代培养 | 第12页 |
| 4.2 VSMCs的冻存 | 第12页 |
| 4.3 VSMCs的复苏 | 第12页 |
| 5 CCK-8检测技术 | 第12-13页 |
| 5.1 OA对ox-LDL诱导VSMCs增殖的影响 | 第12-13页 |
| 5.2 si-RNA对VSMCs细胞活力的影响 | 第13页 |
| 6 RT-PCR法检测 | 第13-16页 |
| 6.1 Trizol法提取总RNA | 第13页 |
| 6.2 RNA浓度、纯度的检测 | 第13-14页 |
| 6.3 反转录 | 第14页 |
| 6.4 cDNA的扩增 | 第14-15页 |
| 6.5 琼脂糖凝胶电泳 | 第15-16页 |
| 7 Western Blot法检测 | 第16-18页 |
| 7.1 细胞中线粒体的提取 | 第16页 |
| 7.2 蛋白浓度的测定 | 第16页 |
| 7.3 聚丙烯酰胺凝胶电泳 | 第16-18页 |
| 8 细胞内ROS试剂盒检测不同给药组的ROS的表达变化 | 第18页 |
| 9 siRNA转染VSMCs | 第18-20页 |
| 9.1 转染效率的检测 | 第18-20页 |
| 结果 | 第20-32页 |
| 1 OA对ox-LDL诱导VSMCs增殖的抑制作用 | 第20页 |
| 2 Lipofectamine 3000；si-RNA对细胞活力的影响 | 第20-21页 |
| 3 ox-LDL诱导VSMCs内CoQ10、UCP2、Cyto-C mRNA表达的经时变化 | 第21-23页 |
| 4 OA对ox-LDL诱导VSMCs增殖中CoQ10、UCP2、Cyto-C mRNA表达的影响 | 第23-25页 |
| 5 OA对ox-LDL诱导VSMCs增殖中CoQ10、UCP2、Cyto-C蛋白表达的影响 | 第25-26页 |
| 6 细胞内ROS试剂盒检测不同给药组的ROS的表达变化 | 第26-27页 |
| 7 si-CoQ10、si-UCP2的转染效率 | 第27-28页 |
| 8 si-CoQ10对模型组和OA组细胞中UCP2 mRNA表达水平的影响 | 第28-29页 |
| 9 si-UCP2对模型组和OA组细胞中UCP2 mRNA、ROS表达水平的影响 | 第29-30页 |
| 10 UCP2的特异性抑制剂京尼平对模型组细胞中UCP2 mRNA、ROS、Cyto-CmRNA表达水平的影响 | 第30-32页 |
| 讨论 | 第32-37页 |
| 结论 | 第37-38页 |
| 参考文献 | 第38-47页 |
| 综述 | 第47-71页 |
| 综述参考文献 | 第58-71页 |
| 攻读学位期间的研究成果 | 第71-72页 |
| 缩略词表 | 第72-73页 |
| 致谢 | 第73-74页 |
