英文缩略词表 | 第6-7页 |
中文摘要 | 第7-9页 |
Abstract | 第9-10页 |
引言 | 第12-15页 |
实验材料与方法 | 第15-25页 |
1 细胞株 | 第15页 |
2 药物、试剂、耗材及仪器 | 第15-17页 |
2.1 药物购买 | 第15页 |
2.2 主要试剂及耗材 | 第15-16页 |
2.3 主要仪器 | 第16-17页 |
3 药物及常用试剂的配制 | 第17-18页 |
3.1 白花蛇舌草乙醇提取物的配制 | 第17页 |
3.2 完全培养基的配制 | 第17-18页 |
3.3 MTT溶液的配制 | 第18页 |
4 细胞实验方法 | 第18-24页 |
4.1 细胞培养 | 第18页 |
4.2 EEHDW对大肠癌细胞转移的影响 | 第18-22页 |
4.3 EEHDW对HLEC淋巴管新生的影响 | 第22-24页 |
5 数据处理方法 | 第24-25页 |
实验结果 | 第25-44页 |
1 EEHDW对大肠癌细胞转移的影响 | 第25-29页 |
1.1 MTT实验检测大肠癌细胞活力 | 第25-26页 |
1.2 集落形成实验检测大肠癌细胞集落形成能力 | 第26页 |
1.3 划痕(修复)实验检测EEHDW对大肠癌细胞迁移的影响 | 第26-27页 |
1.4 Transwell实验观察EEHDW大肠癌细胞迁移能力的影响 | 第27-28页 |
1.5 Western Blot检测EEHDW对大肠癌细胞VEGF-C蛋白表达的影响 | 第28-29页 |
2 EEHDW对淋巴管内皮细胞淋巴管新生的影响 | 第29-36页 |
2.1 MTT法检测EEHDW对HLEC细胞活力的影响 | 第29-30页 |
2.2 集落形成实验检测HLEC细胞集落形成能力 | 第30-31页 |
2.3 细胞周期实验检测EEHDW对HLEC增殖的影响 | 第31-32页 |
2.4 AnnexinV/PI染色检测细胞凋亡 | 第32-33页 |
2.5 Transwell实验观察EEHDW对HLEC迁移能力的影响 | 第33-35页 |
2.6 Tube Formation实验观察EEHDW对HLEC管腔形成能力的影响 | 第35-36页 |
3 EEHDW对VEGF-C介导的淋巴管生成及PI3K/AKT信号通路活化的影响 | 第36-44页 |
3.1 MTT法检测EEHDW对VEGF-C诱导的HLEC活力的影响 | 第36-37页 |
3.2 集落形成实验观察EEHDW对VEGF-C诱导的HLEC集落形成能力的影响 | 第37页 |
3.3 细胞周期检测EEHDW对VEGF-C诱导的HLEC增殖的影响 | 第37-38页 |
3.4 Annexin V/PI检测细胞凋亡 | 第38-39页 |
3.5 Transwell观察EEHDW对VEGF-C诱导的HLEC迁移能力的影响 | 第39-40页 |
3.6 Tube Formation实验观察EEHDW对VEGF-C诱导的HLEC管腔形成能力的影响 | 第40-42页 |
3.7 Western Blot检测EEHDW对VEGF-C诱导的HIEC的PI3K/AKT信号通路蛋白表达影响 | 第42-44页 |
讨论 | 第44-47页 |
结论 | 第47页 |
问题与展望 | 第47-48页 |
参考文献 | 第48-51页 |
文献综述 | 第51-61页 |
参考文献 | 第55-61页 |
致谢 | 第61-62页 |
作者简历 | 第62-63页 |