摘要 | 第6-9页 |
Abstract | 第9-12页 |
第1章 绪论 | 第21-37页 |
1.1 桑树青枯病的研究进展 | 第21-29页 |
1.1.1 桑树青枯病的病原 | 第21-23页 |
1.1.2 青枯菌的致病机理 | 第23-25页 |
1.1.3 病原分离与检测 | 第25页 |
1.1.4 青枯病的防治 | 第25-29页 |
1.2 咖啡酸及其酯类衍生物的研究进展 | 第29-32页 |
1.2.1 咖啡酸及其常见酯类衍生物 | 第29-30页 |
1.2.2 咖啡酸酯类衍生物的合成 | 第30-32页 |
1.3 蜂胶渣的研究进展 | 第32-34页 |
1.3.1 蜂胶的主要成分 | 第32-33页 |
1.3.2 蜂胶的抑菌活性 | 第33页 |
1.3.3 蜂胶产品及蜂胶渣 | 第33-34页 |
1.4 研究内容 | 第34-37页 |
1.4.1 研究目的 | 第34-35页 |
1.4.2 研究内容 | 第35-36页 |
1.4.3 研究思路 | 第36-37页 |
第2章 蜂胶渣提取物及咖啡酸酯类单体的抑菌活性 | 第37-63页 |
2.1 引言 | 第37-38页 |
2.2 材料与方法 | 第38-43页 |
2.2.1 材料与仪器 | 第38-39页 |
2.2.2 蜂胶渣分级溶剂提取物的制备 | 第39页 |
2.2.3 植物青枯病致病菌抑制活性测定方法 | 第39-42页 |
2.2.4 蜂胶渣提取物中咖啡酸类衍生物的液质联用分析 | 第42-43页 |
2.2.5 统计分析 | 第43页 |
2.3 结果与分析 | 第43-60页 |
2.3.1 蜂胶渣提取物对青枯菌的抑制活性 | 第43-46页 |
2.3.2 蜂胶渣提取物对桑树青枯菌的形态影响 | 第46-48页 |
2.3.3 蜂胶渣乙醇提取物中咖啡酸衍生物的LC-MS定性鉴别 | 第48-51页 |
2.3.4 蜂胶渣提取物中主要咖啡酸类成分的LC-MS/MS定量分析 | 第51-53页 |
2.3.5 咖啡酸及其酯类衍生物单体的抑菌活性比较 | 第53-54页 |
2.3.6 MC和CAPE单体的抑菌活性 | 第54-56页 |
2.3.7 MC和CAPE单体抑制病原生物膜的形成 | 第56-57页 |
2.3.8 电镜观察MC和CAPE单体对桑树青枯菌形态的影响 | 第57-59页 |
2.3.9 MC和CAPE单体的半抑制浓度 | 第59-60页 |
2.4 本章小结 | 第60-63页 |
第3章 双相体系强化酶促合成CAPE及DART-MS表征动力学 | 第63-101页 |
3.1 引言 | 第63-66页 |
3.2 材料与方法 | 第66-72页 |
3.2.1 材料与试剂 | 第66-67页 |
3.2.2 试验仪器 | 第67页 |
3.2.3 环己烷/[Bmim][Tf_2N]中TOPO与咖啡酸酯类的选择性络合可行性 | 第67-68页 |
3.2.4 TOPO-环己烷/[Bmim][Tf_2N]中酶促合成CAPE及动力学 | 第68页 |
3.2.5 TOPO-环己烷/[Bmim][Tf_2N]中的咖啡酸酯类化合物的HPLC方法 | 第68-69页 |
3.2.6 ESI- LC-MS和 1H-NMR表征双相体系酶促合成的产物 | 第69页 |
3.2.7 FT-IR法表征酶促合成反应前后的脂肪酶和络合物的微观结构特征 | 第69页 |
3.2.8 采用连续流填充床微反应器定制合成CAPE | 第69-70页 |
3.2.9 DRAT-MS分析方法 | 第70-71页 |
3.2.10 使用DART-MS监测连续流微反应器中的酶促反应动力学 | 第71页 |
3.2.11 统计分析 | 第71-72页 |
3.3 结果与讨论 | 第72-99页 |
3.3.1 环己烷/[Bmim][Tf_2N]中TOPO和咖啡酸酯类的选择性络合行为 | 第72-75页 |
3.3.2 TOPO-环己烷/[Bmim][Tf_2N]体系中TOPO的浓度 | 第75-77页 |
3.3.3 TOPO-环己烷/[Bmim][Tf_2N]中酶促合成CAPE的工艺优化 | 第77-82页 |
3.3.4 TOPO-环己烷/[Bmim][Tf_2N]的酶促反应动力学和酶微细结构表征 | 第82-86页 |
3.3.5 使用不同介质酶促合成CAPE的分析比较 | 第86页 |
3.3.6 LC-MS和NMR确证产物结构 | 第86-87页 |
3.3.7 DART-MS离子源的极性选择及离子源条件优化 | 第87-92页 |
3.3.8 DART-MS鉴定和定量分析反应物中咖啡酸酯类化合物 | 第92-96页 |
3.3.9 DART-MS~2和HPLC-UV的定量结果比较 | 第96页 |
3.3.10 DART-MS~2测定连续流填充床微反应器中的酶促动力学常数 | 第96-99页 |
3.4 本章小结 | 第99-101页 |
第4章 青枯菌的全基因组测序及比较基因组分析 | 第101-115页 |
4.1 引言 | 第101页 |
4.2 材料与方法 | 第101-103页 |
4.2.1 实验材料 | 第101-102页 |
4.2.2 主要试剂 | 第102页 |
4.2.3 青枯菌样品纯化与基因组DNA的抽提 | 第102页 |
4.2.4 青枯菌样品鉴定 | 第102页 |
4.2.5 DNA样品检测 | 第102-103页 |
4.3 测序与基因组分析 | 第103-104页 |
4.3.1 SMRT Bell文库构建及测序 | 第103页 |
4.3.2 基因组组装 | 第103页 |
4.3.3 基因组组分分析 | 第103页 |
4.3.4 基因功能、通路及耐药性基因注释 | 第103-104页 |
4.3.5 比较基因组分析 | 第104页 |
4.4 结果与讨论 | 第104-114页 |
4.4.1 基因组测序结果 | 第104-105页 |
4.4.2 基因组装结果 | 第105页 |
4.4.3 基因组组分注释结果 | 第105-107页 |
4.4.4 基因功能注释结果 | 第107-108页 |
4.4.5 耐药性基因注释 | 第108-109页 |
4.4.6 共有基因与特有基因分析结果 | 第109页 |
4.4.7 SNP、InDel及基因组结构变异分析结果 | 第109-114页 |
4.5 本章小结 | 第114-115页 |
第5章 MC对桑树主要害虫及天敌适合度的影响 | 第115-131页 |
5.1 引言 | 第115-116页 |
5.2 材料与方法 | 第116-118页 |
5.2.1 供试昆虫 | 第116页 |
5.2.2 供试植物 | 第116-117页 |
5.2.3 供试化合物 | 第117页 |
5.2.4 试验步骤 | 第117-118页 |
5.2.5 数据分析 | 第118页 |
5.3 结果与讨论 | 第118-129页 |
5.3.1 MC对斜纹夜蛾及桑螟幼虫的拒食作用 | 第118-120页 |
5.3.2 斜纹夜蛾及桑螟幼虫对MC的取食选择性 | 第120-122页 |
5.3.3 MC对斜纹夜蛾及桑螟生长抑制作用的测定 | 第122-124页 |
5.3.4 MC对斜纹夜蛾及桑螟高龄幼虫发育的影响 | 第124-126页 |
5.3.5 MC在“害虫——寄生性天敌”营养层级内的传递效应 | 第126-129页 |
5.4 本章小结 | 第129-131页 |
结论 | 第131-133页 |
参考文献 | 第133-141页 |
附录 | 第141-145页 |
攻读博士学位期间发表的学术论文 | 第145-147页 |
致谢 | 第147页 |