| 中文摘要 | 第4-7页 |
| Abstract | 第7-8页 |
| 缩略语/符号说明 | 第11-12页 |
| 前言 | 第12-15页 |
| 研究现状、成果 | 第12-13页 |
| 研究目的、方法 | 第13-15页 |
| 1.1 材料和仪器 | 第15-21页 |
| 1.1.1 实验所用细胞 | 第15页 |
| 1.1.2 实验所用动物 | 第15页 |
| 1.1.3 实验所用主要试剂 | 第15-17页 |
| 1.1.4 实验所用主要仪器和耗材 | 第17-18页 |
| 1.1.5 实验所用溶液及制方法 | 第18-21页 |
| 1.2 实验方法 | 第21-39页 |
| 1.2.1 细胞培养 | 第21-27页 |
| 1.2.1.1 人胚胎干细胞H1体外培养、传代 | 第21-23页 |
| 1.2.1.2 人胚胎干细胞 H1 向人视网膜色素上皮细胞定向诱导 | 第23-24页 |
| 1.2.1.3 人胚胎干细胞源性视网膜色素上皮细胞的分离、纯化培养、传代和冻存 | 第24-26页 |
| 1.2.1.4 人视网膜色素上皮细胞（h RPE）的分离、体外纯化培养、传代和冻存 | 第26-27页 |
| 1.2.2 细胞总 RNA 提取及浓度测定 | 第27-28页 |
| 1.2.3 RNA 逆转录合成单链cDNA | 第28页 |
| 1.2.4 实时荧光定量聚合酶链反应 | 第28-30页 |
| 1.2.5 细胞蛋白提取及浓度测定 | 第30-32页 |
| 1.2.6 免疫印迹试验鉴定hESCs-RPE细胞 | 第32-33页 |
| 1.2.7 细胞免疫荧光试验鉴定hESCs-RPE细胞 | 第33-34页 |
| 1.2.8 流式细胞术检测 L-Tyrosine 处理组和对照组诱导效率 | 第34-36页 |
| 1.2.9 碘酸钠诱导急性视网膜变性大鼠模型 | 第36页 |
| 1.2.10 纯化的 h ESCs-RPE 移植对急性视网膜变性大鼠视功能保护作用 | 第36-37页 |
| 1.2.11 L-Tyrosine 促进人胚胎干细胞向视网膜色素上皮细胞高效分化机制的初步研究 | 第37-39页 |
| 1.3 结果 | 第39-62页 |
| 1.3.1 人胚胎干细胞 H1 体外培养的形态学特征 | 第39页 |
| 1.3.2 不同浓度 L-Tyrosine 对 h ESCs-RPE 诱导效率的影响 | 第39-43页 |
| 1.3.3 不同时间点 L-Tyrosine 处理对 h ESCs-RPE 诱导效率的影响 | 第43-46页 |
| 1.3.4 形态学观察比较 L-Tyrosine 处理组与对照组诱导效率 | 第46-47页 |
| 1.3.5 流式细胞学检测比较 L-Tyrosine 处理组与对照组诱导效率 | 第47-51页 |
| 1.3.6 人视网膜色素上皮细胞的体外培养和鉴定 | 第51页 |
| 1.3.7 hESCs-RPE细胞纯化和鉴定 | 第51-56页 |
| 1.3.8 视网膜下腔移植 h ESCs-RPE 对急性视网膜色素变性大鼠模型视功能的保护作用 | 第56-57页 |
| 1.3.9 L-Tyrosine 促进人胚胎干细胞向视网膜色素上皮细胞高效分化的可能的机制研究 | 第57-62页 |
| 1.4 讨论 | 第62-67页 |
| 1.4.1 人胚胎干细胞向视网膜色素上皮细胞定向诱导 | 第62-63页 |
| 1.4.2 RPE 细胞特异性标记 | 第63-64页 |
| 1.4.3 hRPE获取和鉴定 | 第64-65页 |
| 1.4.4 L-Tyrosine 促进人胚胎干细胞向视网膜色素上皮定向高效分化 | 第65-66页 |
| 1.4.5 hESCs-RPE体内功能初步鉴定 | 第66-67页 |
| 结论 | 第67-68页 |
| 参考文献 | 第68-71页 |
| 发表论文和参加科研情况说明 | 第71-72页 |
| 综述 | 第72-76页 |
| 综述参考文献 | 第76-79页 |
| 致谢 | 第79页 |
