中文摘要 | 第4-6页 |
Abstract | 第6-8页 |
缩略语/符号说明 | 第11-12页 |
前言 | 第12-16页 |
研究现状、成果 | 第12-15页 |
研究目的、方法 | 第15-16页 |
一、叶酸对AD小鼠模型Aβ 沉积的抑制作用 | 第16-32页 |
1.1 对象和方法 | 第16-24页 |
1.1.1.实验动物 | 第16页 |
1.1.2 主要试剂 | 第16-17页 |
1.1.3 仪器设备 | 第17页 |
1.1.4 相关溶液及其配置方法 | 第17-18页 |
1.1.5 动物分组与给药方法 | 第18页 |
1.1.6 AD小鼠模型的基因型鉴定 | 第18-20页 |
1.1.7 AD小鼠模型血清叶酸浓度测定 | 第20-21页 |
1.1.8 AD小鼠模型Aβ 沉淀的检测 | 第21-22页 |
1.1.9 AD小鼠模型Aβ1–40和Aβ1–42含量的检测 | 第22-24页 |
1.1.10 统计分析 | 第24页 |
1.2 结果 | 第24-28页 |
1.2.1 AD小鼠模型基因型鉴定 | 第24-25页 |
1.2.2 叶酸对AD小鼠模型体重的影响 | 第25-26页 |
1.2.3 叶酸对AD小鼠模型血清叶酸浓度的影响 | 第26-27页 |
1.2.4 叶酸对AD小鼠模型脑组织Aβ 沉积的影响 | 第27-28页 |
1.2.5 叶酸对AD小鼠模型脑组织中Aβ1–40和Aβ1–42含量的影响 | 第28页 |
1.3 讨论 | 第28-31页 |
1.3.1 AD小鼠模型概述 | 第28-29页 |
1.3.2 叶酸对AD小鼠模型体重和血清叶酸浓度的影响机制 | 第29-30页 |
1.3.3 叶酸对AD小鼠模型Aβ 沉积的抑制作用 | 第30-31页 |
1.3.4 叶酸对APP/PS1小鼠模型脑组织中Aβ1–42含量的抑制作用 | 第31页 |
1.4 小结 | 第31-32页 |
二、叶酸对AD小鼠模型Aβ 生成相关分泌酶的影响 | 第32-50页 |
2.1 对象和方法 | 第32-41页 |
2.1.1 实验动物 | 第32页 |
2.1.2 主要试剂 | 第32页 |
2.1.3 仪器设备 | 第32-33页 |
2.1.4 溶液及其配置方法 | 第33-34页 |
2.1.5.小鼠干预小鼠干预和实验分组同第一部分。 | 第34页 |
2.1.6 Western Bolt检测APP裂解相关酶的蛋白表达 | 第34-38页 |
2.1.7 RT-PCR检测APP裂解相关酶的mRNA表达 | 第38-41页 |
2.1.8 统计分析 | 第41页 |
2.2 结果 | 第41-46页 |
2.2.1 叶酸对AD小鼠模型脑组织中APP的mRNA和蛋白表达的影响 | 第41-42页 |
2.2.2 叶酸对AD小鼠模型脑组织中ADAM9、ADAM10的mRNA和蛋白表达的影响 | 第42-44页 |
2.2.3 叶酸对AD小鼠模型脑组织中BACE1的mRNA和蛋白表达的影响 | 第44-45页 |
2.2.4 叶酸对AD小鼠模型脑组织中PS1、NCT的mRNA和蛋白表达的影响 | 第45-46页 |
2.3 讨论 | 第46-49页 |
2.3.1 叶酸对AD小鼠模型脑组织中非Aβ 生成途径相关分泌酶的促进作用 | 第46-48页 |
2.3.2 叶酸对AD小鼠模型脑组织中Aβ 生成途径相关分泌酶的抑制作用 | 第48-49页 |
2.4 小结 | 第49-50页 |
结论 | 第50-51页 |
参考文献 | 第51-58页 |
发表论文和参加科研情况说明 | 第58-60页 |
综述 叶酸对AD小鼠模型淀粉样蛋白前体裂解酶的作用及其机制的研究 | 第60-69页 |
综述参考文献 | 第65-69页 |
致谢 | 第69页 |