| 摘要 | 第6-8页 |
| Abstract | 第8-9页 |
| 英文缩写注释语表 | 第10-19页 |
| 第一章 绪论 | 第19-33页 |
| 1.1 植物学概述 | 第19-21页 |
| 1.2 使用历史与现状 | 第21页 |
| 1.3 鳄嘴花的食品营养学研究进展 | 第21-22页 |
| 1.4 鳄嘴花的植物化学研究进展 | 第22-26页 |
| 1.4.1 萜类化合物 | 第22-23页 |
| 1.4.2 糖苷类化合物 | 第23-25页 |
| 1.4.3 叶绿素类 | 第25-26页 |
| 1.4.4 其他类小分子化合物 | 第26页 |
| 1.5 鳄嘴花功能活性研究进展 | 第26-29页 |
| 1.5.1 抗氧化与清除自由基作用 | 第26-27页 |
| 1.5.2 抗炎症作用 | 第27页 |
| 1.5.3 抗病毒作用 | 第27页 |
| 1.5.4 对心脑血管的作用 | 第27-28页 |
| 1.5.5 改善记忆、抗老年痴呆作用 | 第28页 |
| 1.5.6 抗肿瘤细胞增殖作用 | 第28-29页 |
| 1.6 鳄嘴花毒理学研究 | 第29-30页 |
| 1.7 鳄嘴花地域分布与质量控制学的研究进展 | 第30页 |
| 1.8 立题背景和意义 | 第30-31页 |
| 1.9 本课题的研究内容及思路 | 第31-33页 |
| 第二章 鳄嘴花抗肿瘤活性成分的研究 | 第33-49页 |
| 2.1 引言 | 第33页 |
| 2.2 试验材料与仪器设备 | 第33-35页 |
| 2.2.1 细胞株 | 第33页 |
| 2.2.2 试验试剂 | 第33-34页 |
| 2.2.3 仪器设备 | 第34-35页 |
| 2.2.4 试验原材料 | 第35页 |
| 2.3 试验方法 | 第35-40页 |
| 2.3.1 C. nutans粗提物的分离 | 第35-37页 |
| 2.3.2 鳄嘴花各组分体外抑癌试验 | 第37页 |
| 2.3.3 CN30组分中活性成分的分离纯化 | 第37-39页 |
| 2.3.4 CN30的大量制备及CN30质控指标的制备研究 | 第39页 |
| 2.3.5 数据分析 | 第39-40页 |
| 2.4 结果与讨论 | 第40-48页 |
| 2.4.1 鳄嘴花醇提浸膏体外抗肿瘤组分分离及筛选 | 第40-41页 |
| 2.4.2 鳄嘴花乙醇部位中黄酮碳苷的纯化及结构解析 | 第41-46页 |
| 2.4.3 质控指标的确定 | 第46-48页 |
| 2.5 本章小结 | 第48-49页 |
| 第三章 CN30对移植瘤鼠HEPA肝癌细胞全基因转录组水平的影响研究 | 第49-87页 |
| 3.1 引言 | 第49-50页 |
| 3.2 试验材料与仪器设备 | 第50-51页 |
| 3.2.1 试验材料 | 第50页 |
| 3.2.2 试验试剂 | 第50-51页 |
| 3.2.3 试验仪器 | 第51页 |
| 3.3 试验方法 | 第51-59页 |
| 3.3.1 动物模型的分组、给药、送检 | 第51-53页 |
| 3.3.2 测试样品试验分组 | 第53页 |
| 3.3.3 全基因组表达谱芯片的试验内容、流程及操作步骤 | 第53-59页 |
| 3.4 分析方法与统计学处理 | 第59-63页 |
| 3.4.1 分析方法 | 第59-61页 |
| 3.4.2 统计学处理 | 第61-63页 |
| 3.5 结果与讨论 | 第63-85页 |
| 3.5.1 差异基因的筛选——Two Class Dif | 第63-66页 |
| 3.5.2 差异基因的聚类分析——Cluster | 第66-69页 |
| 3.5.3 基因功能的显著性分析——GO-Analysis | 第69-72页 |
| 3.5.4 信号转导通路的显著性分析——Pathway Analysis | 第72-79页 |
| 3.5.5 信号转导网络——Signal-Net | 第79-85页 |
| 3.6 本章小结 | 第85-87页 |
| 第四章 CN30对肝癌移植瘤鼠免疫功能水平影响的研究 | 第87-107页 |
| 4.1 引言 | 第87页 |
| 4.2 试验材料与仪器设备 | 第87-90页 |
| 4.2.1 试验材料 | 第87页 |
| 4.2.2 试验试剂 | 第87-89页 |
| 4.2.3 试验仪器设备 | 第89-90页 |
| 4.3 试验方法 | 第90-95页 |
| 4.3.1 试验动物 | 第90页 |
| 4.3.2 抑瘤率计算 | 第90页 |
| 4.3.3 苏木精-伊红染色 | 第90-91页 |
| 4.3.4 免疫印迹分析（Western Blot analysis） | 第91-92页 |
| 4.3.5 免疫荧光组织化学 | 第92-93页 |
| 4.3.6 免疫组化（immunohistochemistry, IHC）染色 | 第93-94页 |
| 4.3.7 酶联免疫吸附法（Enzyme linked immunosorbent assay，ELISA） | 第94页 |
| 4.3.8 胞内染色流式分析（Intracellular Flow Cytometry，IFC） | 第94-95页 |
| 4.4 数据统计处理 | 第95页 |
| 4.5 结果与讨论 | 第95-106页 |
| 4.5.1 对小鼠体内肝癌肿瘤组织生长的抑制效应 | 第95-96页 |
| 4.5.2 苏木精-伊红（HE）染色验证CN30抗肿瘤活性 | 第96-97页 |
| 4.5.3 CN30治疗对体重和免疫器官指数的影响 | 第97页 |
| 4.5.4 CN30诱导肿瘤细胞凋亡的作用 | 第97-100页 |
| 4.5.5 CN30治疗增强CD8+T细胞浸润，促进肿瘤细胞凋亡的效应 | 第100-102页 |
| 4.5.6 CN30对小鼠Hep A血清细胞因子IFN-γ（干扰素）、TNF-α 和IL-2（白介素 2）水平的免疫促进效应 | 第102页 |
| 4.5.7 CN30促进小鼠CD4+ Th1细胞分化的效应 | 第102-106页 |
| 4.6 本章小结 | 第106-107页 |
| 第五章 鳄嘴花醇提浸膏的安全性评价 | 第107-132页 |
| 5.1 引言 | 第107页 |
| 5.2 试验材料与仪器设备 | 第107-108页 |
| 5.2.1 动物及饲养条件 | 第107页 |
| 5.2.2 试验材料 | 第107-108页 |
| 5.2.3 主要试剂与仪器设备 | 第108页 |
| 5.3 试验方法 | 第108-113页 |
| 5.3.1 Km小鼠急性毒性试验的研究 | 第108-111页 |
| 5.3.2 SD大鼠90天亚慢性毒理试验的研究 | 第111-112页 |
| 5.3.3 小鼠精子畸形试验 | 第112页 |
| 5.3.4 骨髓细胞微核试验 | 第112-113页 |
| 5.4 数据分析 | 第113页 |
| 5.5 结果与讨论 | 第113-131页 |
| 5.5.1 Km小鼠急性毒性试验的研究 | 第113-119页 |
| 5.5.2 SD大鼠90天亚慢性毒理试验的研究 | 第119-123页 |
| 5.5.3 小鼠骨髓细胞微核试验与小鼠精子畸形试验检查分析 | 第123-131页 |
| 5.6 本章小结 | 第131-132页 |
| 第六章 主要结论与工作展望 | 第132-135页 |
| 6.1 主要结论 | 第132-133页 |
| 6.2 存在问题与工作展望 | 第133-134页 |
| 6.2.1 存在问题 | 第133-134页 |
| 6.2.2 工作展望 | 第134页 |
| 6.3 主要创新点 | 第134-135页 |
| 参考文献 | 第135-144页 |
| 致谢 | 第144-145页 |
| 博士在读期间所发表的SCI论文与专利 | 第145-146页 |
| SCI论文 | 第145页 |
| 专利 | 第145-146页 |
| 附录 | 第146-157页 |
| 一、乙酸乙酯提取部分化合物结构的MS、NMR部分图谱 | 第146-151页 |
| 二、正丁醇CN301-7 的部分化合物结构的NMR、MS图谱 | 第151-157页 |
