| 中文摘要 | 第7-11页 |
| Abstract | 第11-15页 |
| 前言 | 第16-24页 |
| 第一部分 细胞因子佐剂IL-21调节HIV-1疫苗诱导细胞免疫反应的研究 | 第24-56页 |
| 第一节 引言 | 第24-25页 |
| 第二节 材料和方法 | 第25-34页 |
| 1. 实验材料 | 第25-28页 |
| 2. 实验方法 | 第28-34页 |
| 第三节 结果 | 第34-52页 |
| 1. HIV-1 DNA疫苗初免-重组痘苗病毒载体疫苗和蛋白疫苗加强策略的免疫原性分析 | 第34-41页 |
| 1.1 小鼠免疫策略 | 第34-35页 |
| 1.2 HIV-1特异性抗体检测 | 第35-37页 |
| 1.3 HIV-1特异性T细胞反应检测 | 第37页 |
| 1.4 HIV-1特异性效应记忆T细胞(TEM)反应检测 | 第37-38页 |
| 1.5 HIV-1特异性多功能T细胞和TEM细胞分析 | 第38-40页 |
| 1.6 调节性T细胞(Treg)检测 | 第40-41页 |
| 2. 小鼠IL-21佐剂调节HIV-1疫苗免疫小鼠的细胞免疫反应 | 第41-52页 |
| 2.1 小鼠IL-21表达质粒的构建和表达鉴定 | 第41页 |
| 2.2 小鼠IL-21蛋白(Pr_mIL-21)的生物活性鉴定 | 第41-42页 |
| 2.3 小鼠免疫策略 | 第42-43页 |
| 2.4 小鼠IL-21在特异性抗体反应中的效应 | 第43-44页 |
| 2.5 小鼠IL-21在Th极性中的效应 | 第44-45页 |
| 2.6 小鼠IL-21在特异性T细胞反应中的效应 | 第45页 |
| 2.7 小鼠IL-21在特异性多功能CD4+T细胞反应中的效应 | 第45-48页 |
| 2.8 小鼠IL-21在特异性多功能CD4+TEM细胞反应中的效应 | 第48-50页 |
| 2.9 小鼠IL-21对调节性T细胞(Treg细胞)的影响 | 第50页 |
| 2.10 小鼠IL-21对B细胞、NK细胞和NK细胞表面IL-21R的影响 | 第50-52页 |
| 第四节 讨论 | 第52-55页 |
| 第五节 结论 | 第55-56页 |
| 第二部分 HIV-1单克隆广谱中和抗体的筛选及其进化成熟机制研究 | 第56-121页 |
| 第一节 引言 | 第56-57页 |
| 第二节 材料和方法 | 第57-72页 |
| 1. 实验材料 | 第57-60页 |
| 2. 实验方法 | 第60-72页 |
| 第三节 结果 | 第72-115页 |
| 1. 单克隆中和抗体的分离鉴定 | 第72-77页 |
| 2. 单克隆广谱中和抗体DRVIA7的分离和鉴定 | 第77-82页 |
| 3. 单克隆广谱中和抗体DRVIA7基因分析 | 第82-84页 |
| 4. 单克隆广谱中和抗体DRVIA7结构分析 | 第84-87页 |
| 5. 糖基化对DRVIA7抗体结合能力的影响 | 第87-88页 |
| 6. 改造DRVIA7抗体轻链提高抗体中和能力 | 第88-95页 |
| 7. 纵向分析研究DRVI01样本的抗体基因库 | 第95-97页 |
| 8. 挑选功能性的DRVIA7-lineage轻链 | 第97-101页 |
| 9. 挑选功能性的DRVIA7-lieage重链 | 第101-108页 |
| 10. DRVIA7-lineage抗体的出现和发展以及中和活性成熟 | 第108-111页 |
| 11. 感染者自身来源轻重链配对抗体的生物学活性 | 第111-115页 |
| 第四节 讨论 | 第115-120页 |
| 第五节 结论 | 第120-121页 |
| 总结 | 第121-123页 |
| 参考文献 | 第123-131页 |
| 个人简介 | 第131-132页 |
| 发表文章 | 第132-133页 |
| 致谢 | 第133页 |
