| 摘要 | 第3-4页 |
| Abstract | 第4-5页 |
| 1 引言 | 第12-24页 |
| 1.1 向日葵菌核病 | 第12-17页 |
| 1.1.1 向日葵菌核病的危害 | 第12页 |
| 1.1.2 向日葵菌核病的症状 | 第12-13页 |
| 1.1.3 核盘菌的侵染循环 | 第13-14页 |
| 1.1.4 核盘菌的致病机理 | 第14页 |
| 1.1.5 向日葵抗菌核病机制的研究 | 第14-16页 |
| 1.1.6 向日葵菌核病的防治 | 第16-17页 |
| 1.2 核盘菌菌核形成机制的研究进展 | 第17-21页 |
| 1.2.1 核盘菌菌核的结构 | 第17-18页 |
| 1.2.2 核盘菌菌核形成过程 | 第18-19页 |
| 1.2.3 影响核盘菌菌核形成的因素 | 第19-21页 |
| 1.3 生防菌防治核盘菌研究进展 | 第21-22页 |
| 1.4 实验目的与意义 | 第22-24页 |
| 2 不同地区向日葵核盘菌致病力分化和药剂敏感性的研究 | 第24-32页 |
| 2.1 材料与方法 | 第24-25页 |
| 2.1.1 实验菌株、供试品种及化学药剂 | 第24页 |
| 2.1.2 药剂母液配制 | 第24页 |
| 2.1.3 培养基的配制 | 第24页 |
| 2.1.4 菌核的活化 | 第24-25页 |
| 2.1.5 核盘菌的致病力测定 | 第25页 |
| 2.1.6 核盘菌对药剂敏感性的测定 | 第25页 |
| 2.2 结果与分析 | 第25-30页 |
| 2.2.1 不同地区向日葵核盘菌致病力的分化 | 第25-28页 |
| 2.2.2 不同地区核盘菌致病力分化的比较 | 第28页 |
| 2.2.3 核盘菌药剂敏感性测定 | 第28-30页 |
| 2.3 结论与讨论 | 第30-32页 |
| 3 不同地区核盘菌菌株生物学特性和其致病力相关性的研究 | 第32-37页 |
| 3.1 材料与方法 | 第32页 |
| 3.1.1 供试菌株及寄主植物 | 第32页 |
| 3.1.2 培养基 | 第32页 |
| 3.1.3 菌核的活化 | 第32页 |
| 3.1.4 核盘菌菌丝生长速度的测定 | 第32页 |
| 3.1.5 核盘菌菌核产量的测定 | 第32页 |
| 3.1.6 向日葵核盘菌菌株致病性的测定 | 第32页 |
| 3.2 数据处理 | 第32-33页 |
| 3.3 实验结果 | 第33-37页 |
| 3.3.1 核盘菌不同菌株生长速度的测定结果 | 第33页 |
| 3.3.2 核盘菌不同菌株菌核产量的比较 | 第33页 |
| 3.3.3 不同核盘菌菌株致病力测定结果 | 第33-35页 |
| 3.3.4 向日葵核盘菌菌株各生物学特性及致病力的相关性分析 | 第35页 |
| 3.3.5 结论与讨论 | 第35-37页 |
| 4 H_2O_2在核盘菌菌核形成过程中的作用 | 第37-46页 |
| 4.1 材料与方法 | 第37-39页 |
| 4.1.1 供试菌株 | 第37页 |
| 4.1.2 化学试剂 | 第37页 |
| 4.1.3 H_2O_2标准曲线的制作以及H_2O_2含量的测定 | 第37页 |
| 4.1.4 核盘菌超氧化物歧化酶酶活性的测定 | 第37-38页 |
| 4.1.5 核盘菌过氧化氢酶活性的测定 | 第38页 |
| 4.1.6 核盘菌菌丝体RNA的提取 | 第38-39页 |
| 4.1.7 RNA反转录及PCR | 第39页 |
| 4.1.8 核盘菌菌丝的显微镜观察 | 第39页 |
| 4.2 结果与分析 | 第39-44页 |
| 4.2.1 核盘菌菌核形成过程的显微镜观察 | 第39-40页 |
| 4.2.2 向日葵核盘菌菌核形成不同阶段伴随着细胞内H_2O_2的变化 | 第40-41页 |
| 4.2.3 外源添加H_2O_2对核盘菌菌核形成的影响 | 第41-43页 |
| 4.2.4 核盘菌菌核形成过程中ROS清除酶SOD和CAT活性的变化 | 第43-44页 |
| 4.3 讨论 | 第44-46页 |
| 5 H_2O_2在cAMP抑制核盘菌菌核形成过程中的作用 | 第46-54页 |
| 5.1 材料和方法 | 第46页 |
| 5.1.1 H_2O_2标准曲线的制作以及H202含量的测定 | 第46页 |
| 5.1.2 H2DCFDA染色 | 第46页 |
| 5.1.3 实时定量PCR | 第46页 |
| 5.1.4 核盘菌菌核Initial转接实验 | 第46页 |
| 5.1.5 核盘菌SOD和CAT酶活的测定 | 第46页 |
| 5.2 结果和分析 | 第46-53页 |
| 5.2.1 外源添加cAMP抑制向日葵核盘菌菌核的形成 | 第46-50页 |
| 5.2.2 核盘菌外源添加cAMP后Nox基因转录水平的变化 | 第50-51页 |
| 5.2.3 添加cAMP后核盘菌菌株中SOD和CAT酶活性的变化 | 第51-53页 |
| 5.3 讨论 | 第53-54页 |
| 6 枯草芽孢杆菌菌株S-1°抑制核盘菌菌核形成的机理研究 | 第54-64页 |
| 6.1 研究背景 | 第54页 |
| 6.2 材料与方法 | 第54-55页 |
| 6.2.1 供试菌株 | 第54页 |
| 6.2.2 化学试剂 | 第54页 |
| 6.2.3 H_2O_2标准曲线的制作以及H_2O_2含量的测定 | 第54页 |
| 6.2.4 SOD和CAT酶活性的测定 | 第54页 |
| 6.2.5 核盘菌菌丝体RNA的提取和反转录PCR | 第54-55页 |
| 6.2.6 核盘菌菌丝的显微镜观察 | 第55页 |
| 6.2.7 核盘菌菌丝体内cAMP的测定 | 第55页 |
| 6.3 结果与分析 | 第55-63页 |
| 6.3.1 S-16菌株生防效果的鉴定 | 第55-56页 |
| 6.3.2 S-16滤液对核盘菌菌丝生长的影响 | 第56-57页 |
| 6.3.3 S-16滤液对核盘菌菌丝内部H_2O_2浓度的影响 | 第57-58页 |
| 6.3.4 S-16对核盘菌SOD和CAT酶活的影响 | 第58-60页 |
| 6.3.5 S-16对核盘菌Nox基因转录水平的影响 | 第60-61页 |
| 6.3.6 S-16对核盘菌cAMP含量的影响 | 第61-62页 |
| 6.3.7 外源添加S-16滤液对核盘菌 Ac 基因转录水平的影响 | 第62-63页 |
| 6.4 讨论 | 第63-64页 |
| 7 蜡状芽孢杆菌菌株CF4-51抑制核盘菌菌核形成的机理研究 | 第64-78页 |
| 7.1 研究背景 | 第64-65页 |
| 7.2 材料与方法 | 第65-66页 |
| 7.2.1 供试菌株 | 第65页 |
| 7.2.2 CF4-51处理核盘菌的方法 | 第65页 |
| 7.2.3 H_2O_2标准曲线的制作以及H_2O_2含量的测定 | 第65页 |
| 7.2.4 核盘菌SOD酶活性的测定 | 第65页 |
| 7.2.5 核盘菌CAT活性的测定 | 第65页 |
| 7.2.6 核盘菌菌丝体RNA的提取 | 第65页 |
| 7.2.7 RNA反转录及RT-PCR | 第65-66页 |
| 7.2.8 核盘菌菌丝的显微镜观察 | 第66页 |
| 7.3 结果与分析 | 第66-76页 |
| 7.3.1 CF4-51对核盘菌菌核形成的影响 | 第66-67页 |
| 7.3.2 CF4-51对核盘菌菌丝结构的影响 | 第67-69页 |
| 7.3.3 CF4-51对核盘菌菌丝内部H_2O_2含量的影响 | 第69-70页 |
| 7.3.4 CF4-51对核盘菌Nox基因转录水平的影响 | 第70-72页 |
| 7.3.5 CF4-51对峙处理后核盘菌cAMP含量的变化 | 第72页 |
| 7.3.6 CF4-51对峙处理后核盘菌SOD、CAT酶活性的变化 | 第72-74页 |
| 7.3.7 CF4-51处理后核盘菌Sod与Cat基因的相对表达量检测 | 第74-75页 |
| 7.3.8 CF4-51对峙培养对核盘菌Sl2基因转录水平的影响 | 第75-76页 |
| 7.4 讨论 | 第76-78页 |
| 全文讨论 | 第78-82页 |
| 结论 | 第82-83页 |
| 附录 | 第83-90页 |
| 致谢 | 第90-91页 |
| 参考文献 | 第91-100页 |
| 作者简介 | 第100页 |
