| 摘要 | 第1-8页 |
| Abstract | 第8-10页 |
| 缩略词英文对照表 | 第10-13页 |
| 第一章 引言 | 第13-27页 |
| ·羊痘病毒概述 | 第13-15页 |
| ·miRNA的分子特征及在动物中的合成 | 第15-18页 |
| ·miRNA在HIV-1病毒感染过程中的作用 | 第18-21页 |
| ·miRNA的主要检测方法 | 第21-23页 |
| ·Northern blotting杂交 | 第21页 |
| ·miRNA芯片 | 第21页 |
| ·Q-PCR(real time quantitative PCR) | 第21-22页 |
| ·高通量测序 | 第22-23页 |
| ·靶基因预测方法 | 第23-25页 |
| ·研究目的与意义 | 第25-27页 |
| 第二章 羊痘病毒感染过程中ova-miR-34a-5p的动态表达 | 第27-38页 |
| ·实验材料 | 第27-28页 |
| ·主要试剂 | 第27页 |
| ·主要仪器 | 第27-28页 |
| ·实验方法 | 第28-32页 |
| ·羔羊睾丸(LT)细胞培养 | 第28-29页 |
| ·LT细胞的接毒与收毒 | 第29页 |
| ·实时定量PCR(Q-PCR)反应 | 第29-32页 |
| ·实验结果 | 第32-37页 |
| ·提取的样品总RNA质量检测 | 第32-35页 |
| ·引物质量及内参基因检测 | 第35-36页 |
| ·ova-miR-34a-5p在病毒感染过程中表达量变化的验证 | 第36-37页 |
| ·讨论 | 第37-38页 |
| 第三章 mir-34a及其靶标基因的生物信息学分析 | 第38-51页 |
| ·实验材料 | 第38页 |
| ·实验方法 | 第38-39页 |
| ·mir-34a序列的获得 | 第38-39页 |
| ·系统发生分析 | 第39页 |
| ·靶基因预测 | 第39页 |
| ·靶基因功能分析 | 第39页 |
| ·实验结果与分析 | 第39-49页 |
| ·mir-34a的序列保守性及在基因组中的定位 | 第39-41页 |
| ·系统进化树的构建 | 第41-42页 |
| ·靶基因预测 | 第42-45页 |
| ·靶基因功能分析 | 第45-49页 |
| ·讨论 | 第49-51页 |
| 第四章 ova-miR-34a-5p的靶基因mycn的初步鉴定 | 第51-66页 |
| ·实验材料 | 第51-52页 |
| ·细胞、菌种和试剂 | 第51-52页 |
| ·主要实验器材 | 第52页 |
| ·实验方法 | 第52-59页 |
| ·LT细胞总RNA的提取 | 第52页 |
| ·mycn 3’UTR序列的克隆 | 第52-54页 |
| ·双荧光素酶报告基因重组载体的构建 | 第54-58页 |
| ·双荧光素酶报告基因检测 | 第58-59页 |
| ·统计学处理 | 第59页 |
| ·实验结果与分析 | 第59-64页 |
| ·总RNA提取质量检测 | 第59-60页 |
| ·mycn 3'UTR序列扩增结果 | 第60-61页 |
| ·双荧光素酶报告基因重组载体的构建与鉴定 | 第61-62页 |
| ·双荧光素酶报告基因检测 | 第62-64页 |
| ·统计学处理 | 第64页 |
| ·讨论 | 第64-66页 |
| 第五章 全文结论 | 第66-67页 |
| 参考文献 | 第67-75页 |
| 致谢 | 第75-76页 |
| 个人简介 | 第76页 |
