| 摘要 | 第1-6页 |
| Abstract | 第6-11页 |
| 引言 | 第11-13页 |
| 1 实验材料 | 第13-17页 |
| ·质粒提取材料 | 第13页 |
| ·质粒提取用试剂 | 第13页 |
| ·质粒提取用培养基 | 第13页 |
| ·细胞培养用试剂 | 第13-14页 |
| ·分子生物学试剂 | 第14页 |
| ·药物 | 第14页 |
| ·试剂盒 | 第14页 |
| ·常用溶液配方 | 第14-15页 |
| ·实验动物 | 第15页 |
| ·实验用仪器设备 | 第15-17页 |
| 2 实验方法 | 第17-23页 |
| ·细胞培养实验方法 | 第17-19页 |
| ·SO Aβ_(42)的配制和检测 | 第17页 |
| ·原代海马神经元的培养 | 第17-18页 |
| ·神经元转染 | 第18页 |
| ·药物处理 | 第18-19页 |
| ·APP&PS1 转基因鼠的鉴定 | 第19-20页 |
| ·DNA 提取 | 第19页 |
| ·PCR 反应 | 第19-20页 |
| ·琼脂糖凝胶电泳 | 第20页 |
| ·RNA 提取、转录及 RT-PCR | 第20-21页 |
| ·RNA 提取 | 第20页 |
| ·RNA 转录 | 第20页 |
| ·RT-PCR | 第20-21页 |
| ·统计分析 | 第21页 |
| ·行为学实验方法 | 第21-23页 |
| ·新物体识别 | 第21页 |
| ·强迫游泳 | 第21页 |
| ·水迷宫实验 | 第21-23页 |
| 3 实验结果 | 第23-39页 |
| ·SO Aβ_(42)、BBG 对海马神经元树突树的影响 | 第23-25页 |
| ·SO Aβ_(42)的鉴定 | 第23页 |
| ·SO Aβ_(42)、BBG 处理对神经元树突树长度、分支的影响 | 第23-25页 |
| ·SO Aβ_(42)、BBG 对海马神经元树突丝的影响 | 第25-27页 |
| ·SO Aβ_(42)、BBG 对海马神经元树突丝长度的影响 | 第25-26页 |
| ·SO Aβ_(42)、BBG 对海马神经元树突丝密度的影响 | 第26-27页 |
| ·SO Aβ_(42)、BBG 对海马神经元树突棘的影响 | 第27-28页 |
| ·APP&PS1 转基因鼠鉴定结果 | 第28-29页 |
| ·P2X7 受体在 APP&PS1 转基因鼠海马中的表达变化 | 第29-32页 |
| ·P2X7 受体在 APP&PS1 转基因鼠表达定性检测 | 第29-30页 |
| ·RT-PCR 实验的 GAPDH 和 P2X7 标准曲线 | 第30-31页 |
| ·P2X7 受体在 3 个时间点的表达 | 第31-32页 |
| ·新物体识别实验结果 | 第32-33页 |
| ·APP&PS1 转基因鼠新物体识别结果 | 第32-33页 |
| ·ICR 小鼠新物体识别结果 | 第33页 |
| ·强迫游泳实验结果 | 第33-34页 |
| ·水迷宫实验结果 | 第34-39页 |
| ·实验过程 | 第34-35页 |
| ·训练期轨迹图 | 第35页 |
| ·训练期小鼠逃避潜伏期 | 第35-36页 |
| ·探索期小鼠穿越目标象限的路程百分比 | 第36-37页 |
| ·探索期小鼠穿越原有平台位置的次数 | 第37-39页 |
| 4 讨论 | 第39-42页 |
| 5 结论 | 第42-43页 |
| 参考文献 | 第43-46页 |
| 综述 | 第46-57页 |
| 参考文献 | 第53-57页 |
| 在学研究成果 | 第57-58页 |
| 致谢 | 第58页 |
